O estudo da atividade antimicrobiana foi realizado no Centro Especializado em Micologia Médica desta universidade.
3.3.1 Atividade antibacteriana in vitro
Em 1997, Peres et al. investigaram a atividade antibacteriana do extrato aquoso-etanólico, de quatro frações do extrato metanólico e de substâncias isoladas (catequina e ácido acetil aleuritólico) da casca do tronco do Croton urucurana contra
Staphylococcus aureus e Salmonella typhimurium. Em seus resultados, eles
mostraram que o ácido acetil aleuritólico exibiu melhor atividade, com uma concentração inibitória mínima (CIM) de 0,1 mg/mL, enquanto os outros materiais testados exibiram CIM variando entre 0,8 e 6 mg/mL. Pelo fato de popularmente o LCU ser utilizado em sua forma bruta, forma esta que não foi testada por Peres et al. (1997), e também por não terem sido utilizadas cepas resistentes a antibióticos, resolvemos investigar a atividade do LCU contra cepas de Staphylococcus aureus, uma bactéria gram positiva, resistentes e sensíveis e oxacilina e também contra cepas de Escherichia coli, uma enterobactéria gram negativa. Para este estudo, utilizamos o método de difusão em poços no ágar (HUFFORD et al., 1975).
Placas de Petri de 25 cm de diâmetro foram preparadas com 25 mL de ágar Batata estéril. Após solidificação, foram produzidos poços de 6 mm de diâmetro no ágar com o auxílio de uma pipeta de Pasteur. A superfície do ágar foi então inoculada com uma suspensão de culturas de bactérias em solução salina (NaCl 0,9%) em uma concentração equivalente ao grau 0,5 da escala de McFarland. Foram utilizadas 10 cepas de Staphylococcus aureus, sendo 5 sensíveis e 5 resistentes à oxacilina, e 10 cepas de Escherichia coli.
O LCU foi dissolvido em água destilada para o preparo de soluções nas concentrações de 100, 50, 25, 12,5 e 6,25 mg/mL. Foram adicionados a cada um dos poços 50 µL de cada uma das soluções. As placas foram incubadas em estufa a 35 oC, por 24 h. O diâmetro da zona de inibição ao redor dos poços foi registrado após o período de incubação. A presença de zonas de inibição de crescimento ao redor dos poços é considerada, neste modelo, como um indicativo preliminar de atividade antibacteriana.
3.3.2 Atividade antifúngica in vitro
Para o estudo da atividade antifúngica do LCU, foi realizado inicialmente um teste preliminar onde tubos de ensaio contendo LCU diluído em ágar Batata em concentrações crescentes (5, 10, 20 e 40 mg/mL) foram inoculados com uma suspensão de fungo em solução salina (NaCl 0,9%) numa concentração equivalente ao grau 0,5 da escala de McFarland. Foram utilizados três gêneros de leveduras (Candida sp., Trichosporon sp., Malassezia sp.), três gêneros de fungos filamentosos não-dermatófitos (Fusarium sp., Aspergillus sp., Penicillium sp.) e um gênero de fungo filamentoso do grupo de fungos dermatófitos (Microsporum sp.), sendo testadas duas espécies de cada um dos gêneros. Depois do período de incubação (8 dias para o fungo filamentoso e 24 h para as leveduras), a 25-28 oC, verificamos a presença ou não de crescimento do fungo.
O LCU inibiu o crescimento do Microsporum em todas as doses testadas, contudo não inibiu o crescimento dos demais fungos, desta forma direcionamos nosso estudo para a avaliação da atividade antifúngica do LCU contra dermatófitos.
O National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS) dos Estados Unidos, em 1982, definiu dois métodos padronizados de susceptibilidade de leveduras e fungos filamentosos, o M27-A e o M38-P, respectivamente. Contudo, o M38-P não menciona testes de susceptibilidade antifúngica de dermatófitos. A avaliação da atividade antifúngica no LCU contra dermatófitos foi realizada de acordo com o método de difusão em discos de papel descrito por Barry et al., em 1979. Foram testadas cinco espécies de dermatófitos (Trichophyton
Epidermophyton floccosum), tendo sido utilizados 5 microrganismos isolados de
cada espécie.
Placas de Petri, com 15 cm de diâmetro, contendo ágar Batata foram inoculadas em sua superfície com uma suspensão padrão do fungo (grau 0,5 da escala de McFarland) em solução salina (NaCl 0,9%) estéril. O LCU foi dissolvido em água destilada para obtenção das concentrações teste de 300; 150; 75; 37,5 e 18,75 mg/mL. A griseofulvina foi utilizada como controle positivo e foi dissolvida em dimetil sulfóxido (DMSO) na concentração de 0,6 mg/mL. Discos de papel de filtro estéreis, com diâmetro de 5 mm, foram impregnados com 10 µL de cada uma das diferentes soluções, passando cada disco a conter, portanto, 3,0; 1,5; 0,75; 0,375 ou 0,1875 mg de LCU ou 6,0 µg de griseofulvina. Os discos foram então colocados da superfície do ágar de cada uma das placas de Petri. Os discos contendo as cinco diferentes quantidades do LCU a serem testadas foram cuidadosamente posicionados em uma mesma placa (Figura 6). Como controle veículo foi utilizado DMSO (10 µL). O diâmetro da zona de inibição ao redor dos discos foi medido após 8 dias de incubação a 25-28 oC. O valor de cada zona de inibição foi calculado como a média, em mm, de quatro medidas realizadas em diferentes direções com o objetivo de minimizar a possibilidade de erro.
Paralelamente a este experimento foram testadas, utilizando a mesma metodologia, as frações aquosa e acetona do LCU na concentração de 300 mg/mL, ou seja, 3 mg/disco, contra duas cepas de Trichophyton rubrum e duas de
FIGURA 6. Posicionamento dos discos contendo diferentes quantidades do látex do Croton urucurana no método de difusão
em discos utilizando Trichophyton mentagrophytes.
3,0 mg/disco
1,5 mg/disco
0,75 mg/disco
0,37 mg/disco 0,18 mg/disco
3.3.2.1 Determinação da concentração inibitória mínima
O método de diluição em tubos foi utilizado para determinar a CIM do LCU frente às espécies estudadas. Diluições em série (SYDNEY; FINEGOLD; ELLEN BARON, 2001) a partir de uma solução estoque de Croton urucurana (10 mg/mL, diluído em ágar Sabouraud) foram incorporadas em tubos de ensaio contendo 0,5 mL de ágar Sabouraud até a obtenção de concentrações de 5,0; 2,5; 1,25; 0,625; 0,3125 e 0,15625 mg/mL. Todos os tubos receberam 50 µL do inóculo padrão (grau 0,5 da escala de McFarland) de cada organismo. Tubos contendo apenas 0,5 mL do ágar Sabouraud e 50 µL do inóculo foram utilizados como controle veículo. O ágar Sabouraud foi utilizado como controle negativo de crescimento de fungos. Todos os tubos, em duplicata, foram incubados a 25-28 oC, durante 8 dias. A CIM foi definida como a menor concentração do LCU sem crescimento visível após o período de incubação. Foram utilizados cinco microrganismos isolados de cada espécie.