5 Hvem blir amanuemis i Volda? Har læreq>eIBonalet ved regionale
5.5 Kommunal- og sosialhøgskoler
O óleo essencial proveniente das raízes da espécie em estudo foi quem apresentou o maior rendimento de extração, rendimento este, não tão expressivo para o caule e as folhas da espécie em estudo. O emprego do IRL se fez útil para caracterizar os compostos extraídos, pois o banco de dados de espectros de massas em algumas ocasiões não se tornou útil. Isso porque diferentes comostos possuem o mesmo padrão de fragmentação.
Os compostos majoritários da raiz, extraídos por hidrodestilação, foram o α- pineno, β-pineno e o β-felandreno. Os majoritários do caule foram o α-pineno, α-copaeno, δ- cadineno e humuleno epoxido II. Para as folhas os majoritários foram α-copaeno, trans-β- cariofileno, germacreno D, zingibereno e óxido de cariofileno. A sobreposição do perfil cromatográfico do óleo essencial destas três partes da planta mostrou semelhança apenas para a amostra proveniente do caule e das raízes. Além disso, as variações na concentração corroboram com os dados da literatura.
A utilização da MEFS foi útil para verificar quais compostos são perdidos na técnica tradicional de hidrodestilação. Para isso, um estudo das melhores condições de extração foi realizado, mostrando que, a fibra PDMS/DVB foi quem se apresentou como mais satisfatória para a extração dos voláteis. Ficou constatado que as condições de extração dos voláteis por MEFS são diferentes para as três partes da planta.
Com a MEFS e hidrodestilação, e análise por CGEM, foi possível identificar 76 compostos distribuídos nas três partes da planta. Comparando estas duas técnicas foi possível confirmar a formação de produtos de oxidação no processo de extração por hidrodestilação Uma comparativa da distribuição destes compostos mostrou que existe uma semelhança destes compostos entre o caule e as raízes. Evidenciando que, a propriedade biológica do óleo essencial destas duas partes são semelhantes. O estudo mostrou que 20 compostos são perdidos na hidrodestilação, mostrando que a MEFS é satisfatório na extração destes voláteis. O óleo essencial proveniente das raízes e do caule mostraram-se promissores quanto a inibição do crescimento de três linhagens de células tumorais humanas. Sendo estas OVCAR-8 (ovário), SF-295 (glioblastoma) e HCT-116 (colon). Com isso, um estudo mais detalhado deverá ser realizado. A semelhança para esta propriedade do óleo essencial do caule e das raízes pode ser justificado pela semelhança fitoquímica destas amostras.
A curva de Van Deemter foi útil para determinar o fluxo da fase móvel que apresentasse a melhor eficiência em termos de altura de pratos. O suplemento Solver da Microsoft Excel® se tornou adequado para estimar os coeficientes de difusão dos solutos na
fase móvel e na fase estacionária da coluna cromatografica. As condições instrumentais em que foi analisado o dodecano e o trans-β-cariofileno na espécie Plectranthus grandis se mostraram adequadas para a validação da metodologia de quantificação do trans-β-cariofileno no caule e nas folhas. O método do padrão interno foi mais adequado do que o método do padrão externo. A quantificação obtida pelo método da normalização apresentou resultados próximos ao método do padrão interno para a quantificação do trans-β-cariofileno no óleo essencial do caule e das folhas da espécie Plectranthus grandi.
REFERÊNCIAS
1. LÓPEZ, C.A.A. Considerações gerais sobre plantas medicinais. Ambiente: Gestão e
Desenvolvimento, Boa Vista, p. 19 – 27, 2006.
2. RIBEIRO, P.G.F. Plantas Aromáticas e Medicinais: cultivo e utilização. Londrina: Instituto Agronômico do Paraná – IAPAR, 2008.
3. BUCHANAN, B.B.; GRUISSEM, W; JONES, R.H. Biochemistry & Molecular
Biology of Plants. Maryland: American Society of Plant Physiologists, 2000.
4. ALBUQUERQUE, R. L. D; SILVA, M.G.D.V; MACHADO, M.I.L; MATOS,
F.J.D.A; MORAIS, S.M.D; NETO, J.S. Chemical composition and antioxidant
activity of Plectranthus grandis and P. ornatus essential oils from north-eastern Brazil.
Flavour and Fragrance Journal, v. 22, p.24-26, 2007.
5. LUKHOBA, C.W.; SIMMONDS, M.S.J.; PATON, A.J. Plectranthus: A review of ethnobotanical uses. Journal of Ethnopharmacology, Nairobi, n. 103, p. 1 – 24, 2006.
6. CRAVEIRO, A.A. Óleos essenciais de plantas do Nordeste. Fortaleza: Edições UFC, 1981.
7. CAMUS, J.A.; TRUJILLO, M.A. Contribution of chemistry to the essential oils of oregano. Rev. Boliv. Quim., San Andres, v. 28, p.1-5, 2011.
8. LIAO, PENG-YING; LU, RU-MEI; SHAO, MIN-MIN; ZHU, XIAO-YONG; LI,
BING. Volatile constituents from Viscum ovalifolium DC. extracted by steam distillation and CO2 supercritical fluid extraction. Shizhen Guoyi Guoyao, v.24, p. 1274-1276, 2013.
9. VARGAS, R. M. F.; BARROSO, M. S. T.; GOES, N. R.; SCOPEL, R.; FALCAO, M.A.; FINKLER, D. S. C.; CASSEL, E. Natural products obtained by subcritical and supercritical fluid extraction from Achyrocline satureioides (Lam) D.C. using CO2.
Ind. Crops Prod., v.50, p.430-435, 2013.
10. WANG, R. U. I.; WANG, R.; YANG, B. A. O. Comparison of volatile compound composition of cinnamon (cinnamomum cassia presl) bark prepared by
hydrodistillation and headspace solid phase microextraction. Journal of Food Process
Engineering. v. 34, p. 175-185, 2011.
11. MOREIRA, N.; MEIRELES, S.; BRANDÃO, T.; DE PINHO, P. G. Optimization of the HS-SPME–GC–IT/MS method using a central composite design for volatile carbonyl compounds determination in beers. Talanta. v. 117, p. 523-531, 2013. 12. CHAUDHARY, P.; JAYAPRAKASHA, G. K.; PATIL, B. S. Headspace and solid-
phase micro-extraction methods for the identification of volatile flavor compounds in grapefruits. American Chemical Society. 2013.
13. LIN, LI.; ZHUANG, M.; LEI, F.; YANG, B.; ZHAO, M. GC/MS analysis of volatiles obtained by headspace solid-phase microextraction and simultaneous–distillation extraction from Rabdosia serra (MAXIM.) HARA leaf and stem. Food Chemistry. v. 136, p. 555-562, 2013.
14. PAWLISZYN, J. Solid Phase Microextraction: Theory and Practice. New York: Wirley – VHC, 1997.
15. GROB, R.L.; BARRY, E.F. Modern Practice Of Gas Chromatography. Wiley. 4 Ed, 2004.
16. LENZ, G.F. Determinação do índice de kovats para mistura de alcoóis utilizando
software simulador de cromatografia gasosa. In: Encontro de divulgação científica
e tecnológica, 3, 2011, Toledo: UTFPR, 2011. p. 1-5.
17. VIEGAS, M.C.; BASSOLI, D.G. Utilização do índice de retenção linear para caracterização de compostos voláteis em café solúvel utilizando GC-MS e coluna HP-
Innowax. Química Nova. v.30, n. 8, p. 2031 -2034, 2007.
18. VIEIRA, Danielle Ferreira; AZEVEDO, Mariane Martins; MARINS, André Kulitz. Composição química do óleo essencial de chenopodium ambrosioides L. In: Encontro latino americano de pós – graduação. 2006, São José dos Campos.
19. RAVEN, P.H.; EVERT, R.F.; EICHHORN, S.E. Biologia vegetal. 7 ed, Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2007.
20. Paton, A.J., et al., Phylogeny and evolution of basils and allies (Ocimeae, Labiatae) based on three plastid DNA regions. Mol. Phylogenet. Evol., 2004. 31(Copyright (C) 2013 American Chemical Society (ACS). All Rights Reserved.): p. 277-299.
21. BANDEIRA, J.M.; BARBOSA, F.F.; BARBOSA, L.M.P; RODRIGUES, I.C.S.; BACARIN, M.A.; PETERS, J.A.; BRAGA, E.J.B. Composição do óleo essencial de quatro espécies do gênero Plectranthus. Revista Brasileira de Plantas Medicinais, Botucatu, v. 13, n. 13, p. 157 – 164, 2011.
22. TAPPIN, M. R. R.; PEREIRA, J. F. G.; LIMA, L. A.; SIANI, A. C.; MAZZEI, J. L.; RAMOS, M. F. S. Análise química quantitativa para a padronização do óleo de copaíba por cromatografia em fase gasosa de alta resolução. Química Nova, Rio de Janeiro, v. 27, n. 2, p. 236 – 240, 2004.
23. SANTOS, T.G.; REBELO, R.A.; DALMARCO, E.M.; GUEDES, A.; GASPER,
A.L.d.; CRUZ, A.B.; SCHIMT, A.P.; CRUZ, R.C.B.; STEINDEL, M. NUNES, R.K. Composição química e avaliação da atividade antimicrobiana do óleo essencial das folhas de Piper malacophyllum (c. presl.) c. dc. Química Nova, Blumenau, V. 35, n. 3, p. 477 – 481, 2012.
24. VERBEL, J.O.; CERVERA, T.G.; FERNANDEZ, J.G.; COLORADO, B.J.
STASHENKO, E. Chemical composition and antioxidant activity of essential oils isolated from Colombian plants. Revista Brasileira de Farmacognosia. n. 20, p. 568 – 574, 2010.
25. ARAÚJO, A.J.; LORDELLO, A.L.L.; SALES-MAIA, B.H.L.N. Análise Comparativa dos Óleos Essenciais de Folhas e Galhos de Ocotea puberula. Revista Visão
Acadêmica. n. 2, p. 81 – 84, 2001.
26. SILVA, L.P.D. Ação antiespasmódica do transcariofileno e o bloqueio de canais
para ca2+ em músculo liso traqueal de rato. 2010. 95 f. Dissertação (Mestrado
Acadêmico em Ciências Fisiológicas) – Centro de ciências da saúde, Universidade Estadual do Ceará, Fortaleza, 2010.
27. MEVY, J.P.; BESSIERE, J. M.; DHERBOMEZ, M.; MILLOGO, J.; VIANO, J. Chemical composition and some biological activities of the volatile oils of a chemotype of Lippia chevalieri Moldenke. Food Chemistry. n. 101, p. 682 – 685, 2007.
28. SOUZA, T.J.T.; APEL, M. A.; BORDIGNON, S.; MATZENBACHER, N.I.; ZUANAZZI, J.A.S.; HENRIQUES, A.T. Composição química e atividade
antioxidante do óleo volátil de Eupatorium polystachyum DC. Revista Brasileira de
Farmacognosia, v. 17, n. 17, 2007.
29. MENEZES, I.A.C.; MARQUES, M.S.; SANTOS, T.C.; DIAS, K.S. Antinociceptive effect and acute toxicity of the essential oil of Hyptis fruticosa in mice. Fitoterapia, v. 78, p. 192 – 195, 2007.
30. HUSSAIN, J.; REHMAN, N. UR.; AL-HARRASI, A.; ALI, L.; KHAN, A. L.; ALBROUMI, M. A. Essential oil composition and nutrient analysis of selected medicinal plants in Sultanate of Oman. Asian Pacific Journal of Tropical Disease. v.3, p. 421-428, 2013.
31. LU, JING-JING; MA, Q.; SU, L.; DING, K. Extraction of ziziphus spinosa oil and research of its antioxidative active components. Weisheng Yanjiu. V. 41, p. 1016- 1018, 2012.
32. MAGALHAES, H. M.; AQUINO, C. F.; SOARES, E. P. S.; SANTOS, L. D. T.; LOPES, P. S. N. Allelopathic action of essential oils of alecrim-pimenta and
lemongrass on germination of lettuce achenes. Semina: Cienc. Agrar. v. 34, p. 485- 496, 2013.
33. EMBRAPA. Óleos essenciais: aspectos gerais da extração. Pelotas, 2011.
34. TANKEU, S.Y.; VERMAAK, I.; VILJOEN, A.M.; SANDASI, M.; KAMATOU,
G.P.P. Essential oil variation of Tagetes minuta in South Africa – A chemometric approach. Biochemical Systematics and Ecology. v. 51, p. 320-327, 2013.
35. PORRES-MARTÍNEZ, M.; GONZÁLEZ-BURGOS, E.; ACCAME, M. E. C.;
GÓMEZ-SERRANILLOS, M. P. Phytochemical composition, antioxidant and
cytoprotective activities of essential oil of Salvia lavandulifolia Vahl. Food Research
36. Tandon, S.; Ahmad, J.; Ahmad, A. GC-MS analysis of the steam and hydrodistilled essential oil of Matricaria recutita L. flowers of North East Region of India. Asian J.
Chem. v. 25, p. 6048-6050, 2013.
37. GEBARA, S.S.; FERREIRA, W.O.; RÉ-POPPI, N.; SIMIONATTO, E.; CARASEK,
E. Volatile compounds of leaves and fruits of Mangifera indica var. coquinho
(Anacardiaceae) obtained using solid phase microextraction and hydrodistillation. Food
Chemistry. v.127, p. 689 – 693, 2011.
38. BENYELLES, B.; ALLALI, H.; DIB, M.E.A.; DJABOU, N.; TABTI, B.; COSTA, J. Essential oil from Rhaponticum acaule L. roots: Comparative study using HS-
SPME/GC/GC–MS and hydrodistillation techniques. Journal of Saudi Chemical
Society, p. 1- 5, 2011.
39. AZAR, P. A.; MEIBODI, Z. A.; SABER-TEHRANI, M.; LARIJANI, K. Composition of essential oil of leaves stems and roots by different extraction methods of Thymus kotschyanus Boiss. & Hohen var. pseuderiophorus Rech. f.p.p. grown wild in Iran.
Asian J. Chem. v. 23, p. 4271-4275, 2011.
40. HUANG,BAOKANG.; LEI, YANLIN.; TANG, YOUHONG.; ZHANG, JIACHEN.;
QIN, LUPING.; LIU, JUAN. Comparison of HS-SPME with hydrodistillation and SFE for the analysis of the volatile compounds of Zisu and Baisu, two varietal species of Perilla frutescens of Chinese origin. Food Chemistry. v. 125, p. 268-275, 2011. 41. DREW, D.P.; RASMUSSEN, S.K.; AVATO, P.; SIMONSEN, H. T. A Comparison of
Headspace Solid-phase Microextraction and Classic Hydrodistillation for the Identification of Volatile Constituents from Thapsia spp. Provides Insights into Guaianolide Biosynthesis in Apiaceae. Phytochem. Anal. v. 23, p. 44-51, 2012. 42. EL, A. D. M.; DJABOU, N.; DESJOBERT, JEAN-MARIE; ALLALI, H.; TABTI, B.;
MUSELLI, A.; COSTA, J. Characterization of volatile compounds of Daucus crinitus Desf. headspace solid phase microextraction as alternative technique to
hydrodistillation. Chem. Cent. J. v. 4, 2010.
43. YILMAZ, I. N.; KAHRIMAN, N.; TOSUN, G.; TERZIOGLU, S.; ALPAY, K. S.; YAYLI, N. Chemical composition and antimicrobial activity of the essential oils from the aerial parts of Astragalus hamzaoglui extracted by hydrodistillation and
microwave distillation. Rec. Nat. Prod. v. 7, p. 177-183, 2013.
44. HERZI, N.; BOUAJILA, J.; CAMY, S.; CAZAUX, S.; ROMDHANE, M.; CONDORET, J. S. Comparison between supercritical CO2 extraction and hydrodistillation for two species of eucalyptus: yield, chemical composition, and antioxidant activity. J. Food Sci. v. 78, p. C667-C672, 2013.
45. SCHOSSLER, P.; SCHNEIDER, G.L.; WUNSCH, D.; SOARES, G.L. G.; ZINI, C.A. Volatile Compounds of Baccharis punctulata, Baccharis dracunculifolia and Eupatorium laevigatum obtained using Solid Phase Microextraction and
46. CALDAS, S. S.; GONÇALVES, F. F.; PRIMEL, E. G.; PRESTES, O. D.; MARTINS, M. L.; ZANELLA, R. Principais técnicas de preparo de amostra para a determinação de resíduos de agrotóxicos em água por cromatografia líquida com detecção por arranjo de diodos e por espectrometria de massas. Química Nova. v. 34, p. 1604- 1617, 2011.
47. VALENTE, A.L.P.; AUGUSTO, F. Microextração por fase sólida. Química Nova, Campinas, v. 23, n. 4, p. 523-530, 2000.
48. LORD, H.; PAWLISZYN, J. Evolution of solid-phase microextraction technology.
Journal of chromatografhy. v. 885, p. 153 – 193, 2000.
49. LANÇAS, F.M., Validação de métodos cromatográficos de análise. v. 6, São Carlos: Rima, 2004.
50. CERVERA, M.I.; BELTRAN, J.; LOPEZ, F.J.; HERNANDEZ, F. Determination of volatile organic compounds in water by head space-solid-phase microextraction gas chromatography coupled to tandem mass spectrometry with triple quadrupole analyzer. Analytica Chimica Acta. v. 704, p. 87-97, 2011.
51. LU, Z.M.; TÃO, W.Y.; XU, H.Y.; LIM, J.; ZHANG, X.M.; WANG, L.P.; CHEN, J.H.; XU, Z.H. Analysis of volatile compounds of Antrodia camphorata in submerged culture using headspace solid-phase microextraction. Food Chemistry. v.127, p. 662 – 668, 2011.
52. SADOWSKI, C.S.; BRANDE, T.C.; LATER, D.W. Using solid phase microextraction (SPME) and person portable GC-MS for trace level detection of selected volatile organic chemicals in air. LCGC North Am. p.20, 2013.
53. ULANOWSKA, A.; KOWALKOWSKI, T.; HRYNKIEWICZ, K.; JACKOWSKI,
M.; BUSZEWSKI, B. Determination of volatile organic compounds in human breath for Helicobacter pylori detection by SPME-GC/MS. Biomed. Chromatogr. v. 25, p. 391-397, 2011.
54. ZHU, F.; XU, J.; KE, Y.; HUANG, S.; ZENG, F.; LUAN, T.; OUYANG, G. Applications of in vivo and in vitro solid-phase microextraction techniques in plant analysis: A review. Anal. Chim. Acta. v. 794, p.1-14, 2013.
55. BICCHI, C. Analysis of flavors and fragrances: Editorial. Journal of
Chromatographic Science. v.42, p. 401, 2004.
56. CANUTI, V.; CONVERSANO, M.; CALZI, M. L.; HEYMANN, H.; MATTHEWS,
M.A.; EBELER, S.E. Headspace solid-phase microextraction–gas chromatography– mass spectrometry for profiling free volatile compounds in Cabernet Sauvignon grapes and wines. Journal of Chromatography A. v.1216, p. 3012-3022, 2009.
57. WEI, CHANG-BIN; LIU, SHENG-HUI; LIU, YU-GE; LV, LING-LING; YANG,
WEN-XIU; SUN, GUANG-MING. Characteristic Aroma Compounds from Different Pineapple Parts. Molecules. v.16, p. 5104-5112, 2011.
58. GAY, F.; MARAVAL, I.; ROQUES, S.; GUNATA, Z.; BOULANGER, R.;
AUDEBERT, A.; MESTRES, C. Effect of salinity on yield and 2-acetyl-1-pyrroline content in the grains of three fragrant rice cultivars (Oryza sativa L.) in Camargue (France). Field Crops Research. v.117, p.154-160, 2010.
59. SOLÍS-SOLÍS, H. M.; CALDERÓN-SANTOYO, M.; SCHORR-GALINDO, S.;
LUNA-SOLANO, G.; RAGAZZO-SÁNCHEZ, J. A. Characterization of aroma potential of apricot varieties using different extraction techniques. Food Chemistry. v.105, p. 829-837, 2007.
60. BARRA, A.; BALDOVINI, N.; LOISEAU, A. M.; ALBINO, L.; LESECQ, C.; LIZZANI CUVELIER, L. Chemical analysis of French beans (Phaseolus vulgaris L.) by headspace solid phase microextraction (HS-SPME) and simultaneous
distillation/extraction (SDE). Food Chemistry. v. 101, p. 1279-1284, 2007.
61. NAZIMAH, S. A. H.; TAN, C. P.; MIRHOSSEINI, H.; OSMAN, A.; MAT HASHIM, D.; RUSUL, G. Analysis of volatile compounds in five jackfruit (Artocarpus
heterophyllus L.) cultivars using solid-phase microextraction (SPME) and gas chromatography-time-of-flight mass spectrometry (GC-TOFMS). Journal of Food
Composition and Analysis. v. 21, p. 416-422, 2008.
62. SILVA, B.M.; SANTOS, R.P.; MENDES, L.S.;DE PINHO, P.G.; VALENTÃO, P.; ANDRADE, P.B.; PEREIRA, J.A.; CARVALHO, M. Dracaena draco L. fruit:
Phytochemical and antioxidant activity assessment. Food Research International. v. 44, p. 2182-2189, 2011.
63. FEUDO, G.L.; MACCHIONE, B.; NACCARATO, A.; SINDONA, G.; TAGARELLI,
A. The volatile fraction profiling of fresh tomatoes and triple concentrate tomato pastes as parameter for the determination of geographical origin. Food Research
International. v. 44, p. 781-788, 2011.
64. CHIN, S. T.; NAZIMAH, S. A. H.; QUEK, S. Y.; MAN, Y. B. CHE; RAHMAN, R. ABDUL; HASHIM, D. MAT. Analysis of volatile compounds from Malaysian
durians (Durio zibethinus) using headspace SPME coupled to fast GC-MS. Journal of
Food Composition and Analysis. v. 20, p. 31-44, 2007.
65. KIMBARIS, A.C.; SIATIS, N.G.; DAFERERA, D.J.; TARANTILIS, P.A.; PAPPAS, C.S.; POLISSIOU, M.G. Comparison of distillation and ultrasound-assisted extraction methods for the isolation of sensitive aroma compounds from garlic (Allium sativum).
Ultrasonics Sonochemistry. v. 13, p. 54-60, 2006.
66. KANG, WEN-YI; WANG, JIN-MEI; TIAN, PU-YU. Analysis of volatiles in the flowers of Patrinia scabiosifolia BY HS-SPME-GC-MS. Chemistry of Natural
Compounds. v. 47, p. 101-102, 2011.
67. DJABOU, N.; PAOLINI, J.; DESJOBERT, JEAN-MARIE; ALLALI, H.;
ALDOVINI, N.; COSTA, J.; MUSELLI, A. Qualitative and quantitative analysis of volatile components of Teucrium massiliense L. – identification of 6-methyl-3-heptyl acetate as a new natural product. FLAVOUR AND FRAGRANCE JOURNAL. v.25, p. 475-487, 2010.
68. GUEDES DE PINHO, P.; GONÇALVES, R.F.; VALENTÃO, P.; PEREIRA, D.M.; SEABRA, R.M.; ANDRADE, P.B.; SOTTOMAYOR, M. Volatile composition of Catharanthus roseus (L.) G. Don using solid-phase microextraction and gas
chromatography/mass spectrometry. Journal of Pharmaceutical and Biomedical
Analysis. v.49, p. 674-685, 2009.
69. EDRIS, A.; CHIZZOLA, R.; FRANZ, C. Isolation and characterization of the volatile aroma compounds from the concrete headspace and the absolute of Jasminum sambac (L.) Ait. (Oleaceae) flowers grown in Egypt. European Food Research and
Technology. v.226, p. 621-626, 2008.
70. ROUT, P. K.; RAO, Y. R.; SREE, A.; NAIK, S. N. Composition of essential oil, concrete, absolute, wax and headspace volatiles of Murrarya paniculata (Linn.) Jack flowers. FLAVOUR AND FRAGRANCE JOURNAL. v. 22, p. 352-357, 2007. 71. DONG, L.; WANG, J.; DENG, C.; SHEN, X. Gas chromatography-mass spectrometry
following pressurized hot water extraction and solid-phase microextraction for quantification of eucalyptol, camphor, and borneol in Chrysanthemum flowers.
Journal of separation science. v.30, p. 86-89, 2007.
72. CHENG, WEI-WEN; LIN, CHIEN-TSONG; CHU, FANG-HUA; CHANG, SHANG-
TZEN; WANG, SHENG-YANG. Neuropharmacological activities of phytoncide released from Cryptomeria japônica. Journal of Wood Science. v. 55, p.27-31, 2009.
73. HYMETE, A.; ROHLOFF, J.; IVERSEN, TOR-HENNING; KJØSEN, H. Volatile
constituents of the roots of Echinops kebericho Mesfin. FLAVOUR AND
FRAGRANCE JOURNAL. v.22, p.35-38, 2007.
74. ZHANG, C.; QI, M.; SHAO, Q.; ZHOU, S.; FU, RUONONG. Analysis of the volatile compounds in Ligusticum chuanxiong Hort. using HS-SPME–GC-MS. Journal of
Pharmaceutical and Biomedical Analysis. v.44, p.464-470, 2007.
75. BRAITHWAITE, A.; SMITH, F. J. Chromatographic methods. 5 ed. London: Kluwer Academic Publishers, 1996.
76. COLLINS, C.H.; BRAGA G.L.; BONATO P.S. Fundamentos de Cromatografia. Campinas: Editora UNICAMP, 2007.
77. McNair, H.M.; Mili, J.M. Basic gas chromatograph. New York: Wiley, 1997. 78. SCOTT, R.P.W. Chromatographic Detectors: Design, Function, and Operation.
v.70, New York: MARCEL DEKKER, 1996.
79. IAN A. FOWLIS. Gas chromatography. 2 ed. Greenwich: John Wiley & Sons, 1995.
80. SKOOG, DOUGLAS A; WEST, DONALD M.; HOLLER, F. JAMES; CROUCH,
STANLEY R. Fundamentos de Química Analítica. São Paulo: Cengage Learning, 2006.
81. DE HOFFMANN, E.; STROOBANT, V. Mass spectrometry: principles and
applications. 6 ed., Chichester: John Wiley & Sons, 2007.
82. SHIMADZU. Linear Retention Index Function (LRI) in GCMSsolution 2.4 An
excellent help for identification confirmation of target compounds in complex chromatograms.
83. ALVES, P.B.; VICTOR, M.M. Reação da cânfora com boroidreto de sódio: uma estratégia para o estudo da estereoquímica da reação de redução. Química Nova. v.33, n. 10, p. 2274 – 2278, 2010.
84. LINDEN, R.; SARTORI, S.; KELLERMANN, E.; SOUTO, A.A. Identificação de substâncias em análise toxicológica sistemática utilizando um sistema informatizado para cálculo de parâmetros cromatográficos e busca em bases de dados. Química
Nova. 2006.
85. SILVA, D.D.; INNOCENTINI, A.P.; CHIERICE, G.O.; GALHIANE, M.S.; SANTOS, L.S. Avaliação da seletividade de uma nova coluna capilar em
cromatografia gasosa – teste de grob e índice de retenção. Revista Analytica. n. 17, 2005.
86. ADAMS, R.P. Identification of essential oil components by gas
chromatography/mass spectrometry. 2007.
87. RIBANI, M.; BOTTOLI, C.B.G.; COLLINS, C.H.; JARDIM, I.C.F.S. Validação em métodos cromatográficos e eletroforéticos. Química Nova. v. 27, n. 5, p. 771 – 780, 2004.
88. LANÇAS, F.M., Validação de métodos cromatográficos de análise. v. 6, São Carlos: Rima, 2004.
89. FERNANDES, K.G.; DE MORAES, M.; NETO, J.A.G.; NÓBREGA, J.A.;
OLIVEIRA, P.V. Padronização interna em espectrometria de absorção atômica.
Química Nova. v.26, n.2, p.249-252, 2003.
90. BRONSEMA, K.J.; BISCHOFF, R.; VAN DE MERBEL, N.C. Internal standards in the quantitative determination of protein biopharmaceuticals using liquid
chromatography coupled to mass spectrometry. Journal of Chromatography B. v. 893–894, p. 1-14, 2012.
91. CASSIANO, N.M.; BARREIRO, J.C.; MARTINS, L.R.R.; ROCHA, L.R.; REGINA, L.; OLIVEIRA, R.V.; CASS, Q.B. Validação em métodos cromatográficos para análises de pequenas moléculas em matrizes biológicas. Química Nova. v. 32, p.1021-1030, 2009.
92. LIGIERO, C.B.P.; REIS, L. A. D.; PARRILHA, G.L.; BAPTISTA FILHO, M.; CANELA, M.C. Comparação entre métodos de quantificação em cromatografia gasosa: um experimento para cursos de química. Química Nova. v.32, p. 1338-1341, 2009.
93. VAN DEEMTER, J. J.; ZUIDERWEG, F. J.; KLINKENBERG, A. Longitudinal diffusion and resistance to mass transfer as causes of nonideality in chromatography.
Chemical Engineering Science. v.5, p. 271-289, 1956.
94. BANDEIRA, C. M.; FERREIRA, J.M.; BRAGAGNOLO, N.; MARIUTTI, L. R. B.
Desenvolvimento de metodologia analítica para determinação de colesterol em ração para ruminantes através de planejamento experimental fatorial. Química Nova. v. 31, p.1422-1426, 2008.
95. DE ABREU, A. B. G.; DA MATTA, M. H. DE R.; MONTAGNER , É.
Desenvolvimento e validação de método de análise de glifosato em grãos de soja desenvolvimento e validação de método de análise de glifosato em grãos de soja.
Química Nova. v. 31, p.5-9, 2008.
96. FLUMIGNAN, D.L.; FERREIRA, F.D.O.; TININIS, A.G.; LOPES, M.N.; DE OLIVEIRA, J.E. Development, optimization and validation of gas chromatographic fingerprinting of Brazilian commercial gasoline for quality control. Journal of
Chromatography A. v. 1202, p.181-188, 2008.
97. ANVISA. Resolução - RE nº 899, de 29 de maio de 2003. 2003.
98. INMETRO. Orientação sobre validação de métodos analíticos, INMETRO, 2011. 99. GROUP, E.W. The Fitness for Purpose of Analytical Methods, A Laboratory
Guide to Method Validation and Related Topics. 1998.
100. 17025, I.I., International Standard Organization; General Requirements for the Competence of Testing and Calibration Laboratories. 1999.
101. HARRIS, D.C. Quantitative Chemical Analysis. 7 ed. 2007.
102. TOOL, Q., QUALITY TOOL. Disponível gratuitamente em: http://webapps.r- qualitytools.org/index.html. Acesso em: 13/06/2014.
103. MORAISE, Selene Maia de; BRAZ FILHO, Raimundo. Produtos naturais: estudos
químicos e biológicos. Fortaleza: EdUECE, 2007.
104. RODRIGUES, P.A.; MORAIS, S.M.; SOUZA, C.M. Gastroprotective effect of barbatusin and 3-beta-hydroxy-3-deoxibarbatusin, quinonoid diterpenes isolated from Plectranthus grandis, in ethanol-induced gastric lesions in mice. Journal of
Ethnopharmacology, v. 127, p. 725 – 730, 2010.
105. GOMES, R. F.; SANTOS, H; S; D.; ALBUQUERQUE, M. R. J. R.; PESSOA, O. D. L.; LOTUFO, L. V. C.; PESSOA, C. D. Ó.; MORAES, M. O. D.; RODRIGUES, F. A. R. Blainvillea rhomboidea: constituintes químicos e atividade citotóxica. Química Nova. v. 33, p. 1122-1125, 2010.
106. MICHELETTI, A. C.; BEATRIZ, A.; LIMA, D. P. D.; HONDA, N. K.; PESSOA, C. D. Ó.; MORAES, M. O. D.; LOTUFO, L. V.; MAGALHÃES, H. I. F.; CARVALHO, N. C.
P. Constituintes químicos de Parmotrema lichexanthonicum Eliasaro & Adler: isolamento, modificações estruturais e avaliação das atividades antibiótica e citotóxica. Química nova. v. 32, p. 12-20, 2009.
107. Supelco. Chromatographic Products. 1996: p. 373.
108. STASHENKO, E.E.; MARTÍNEZ, J. R. Sampling flower scent for chromatographic analysis. Journal of separation science. v. 31, p.2022-2031, 2008.
91
N° IR Composto
Raiz Caule Folhas
Hidro MEFS Hidro MEFS Hidro MEFS
Média Média Média Média Média Média
1 765 Pent-2-en-1-ol 0,38 ± 0,08 2 792 Hex-3-enal 19,31 ± 0,39 3 846 Hex-2-enal 2,46 ± 0,27 4 850 Hex-3-en-1-ol 29,90 ± 2,29 5 859 Hex-2-en-1-ol 0,39 ± 0,02 6 863 Hexanol 1,43 ± 0,05 7 924 α - Tujeno 0,21 ± 0,05 0,30 ± 0,02 0,21 ± 0,02 8 932 α - Pineno 16,28 ± 3,15 6,56 ± 0,12 8,68 ± 0,49 21,14 ± 3,70 0,07 ± 0,02 0,77 ± 0,06 9 946 Canfeno 1,32 ± 0,14 0,55 ± 0,00 0,47 ± 0,08 0,87 ± 0,07 10 969 Sabineno 0,17 ± 0,03 1,11 ± 0,02 11 974 β - Pineno 5,52 ± 0,32 4,12 ± 0,14 0,84 ± 0,15 4,31 ± 0,04 12 974 Oct-1-en-3-ol 5,01 ± 0,44 13 979 3-Octanona 0,55 ± 0,45 14 988 Mirceno 0,23 ± 0,01 0,28 ± 0,06 0,74 ± 0,11 0,37 ± 0,11 0,51 ± 0,04 15 988 Octan-3-ol 1,09 ± 0,09 16 1001 Hexenil acetato 2,98 ± 0,02 17 1002 Felandreno 0,29 ± 0,07 1,49 ± 0,12 18 1008 Careno (δ-3) 5,09 ± 0,06 4,01 ± 5,49 0,98 ± 0,88 4,17 ± 0,34 19 1014 α - Terpinene 0,27 ± 0,07 20 1020 p- Cimeno 1,25 ± 0,05 0,82 ± 0,50 0,25 ± 0,01 21 1022 o - Cimeno 5,69 ± 0,22 4,70 ± 0,01 0,93 ± 0,08 5,69 ± 0,12 22 1025 β - Felandreno 13,60 ± 0,89 24,56 ± 0,49 1,50 ± 0,01 19,00 ± 0,70 23 1032 β - Ocimeno 0,01 ± 0,00 0,22 ± 0,10 24 1054 γ - terpineno 0,15 ±0,04
92
N° IR Composto
Raiz Caule Folhas
Hidro MEFS Hidro MEFS Hidro MEFS
Média Média Média Média Média Média
25 1065 Sabineno hidratado 0,07 ± 0,01 26 1083 Fenchona 0,15 ± 0,01 0,43 ± 0,16 0,20 ± 0,02 27 1095 Linalol 0,10 ± 0,03 0,38 ± 0,27 0,16 ± 0,01 28 1100 Nonanal 0,31 ± 0,18 29 1118 Cis-Metan-2-en-1-ol 0,15 ± 0,05 30 1136 Trans-Metan-2-en-1-ol 0,16 ± 0,06 31 1141 Canfor 0,20 ± 0,04 1,17 ± 0,65 0,34 ± 0,08 0,38 ± 0,06 32 1165 Borneol 0,64 ± 0,10 2,10 ± 0,54 0,45 ± 0,09 33 1174 Terpinen-4-ol 0,83 ± 0,15 0,54 ± 0,09 0,45 ± 0,00 0,29 ± 0,07 34 1179 p- Cimen-8-ol 0,28 ± 0,24 0,14 ± 0,04 35 1186 α - Terpineol 0,39 ± 0,10 36 1190 Metil Salicilato 4,82 ± 3,90 37 1201 Decanal 0,76 ± 0,10 3,99 ± 0,49 0,36 ± 0,12 0,29 ± 0,10 38 1211 Octanol acetato 0,23 ± 0,02 0,66 ± 0,09 0,11 ± 0,03
39 1218 Fenchil acetato (endo) 0,12 ± 0,04 0,05 ± 0,01
40 1254 Linalol acetato 0,80 ± 0,04 0,21 ± 0,03 41 1283 Isobornil acetato 0,40 ± 0,30 42 1287 Bornil acetato 3,78 ± 0,16 2,16 ± 0,04 1,05 ± 0,17 0,08 ± 0,04 43 1345 α - Cubebeno 0,09 ± 0,01 0,22 ± 0,04 0,29 ± 0,09 44 1350 α - Longipineno 0,29 ± 0,03 0,34 ± 0,13 0,06 ± 0,01 45 1369 Ciclosativeno 0,22 ± 0,09 0,54 ± 0,00 1,30 ± 0,16 46 1374 α - Copaeno 2,59 ± 0,15 2,67 ± 0,55 9,33 ± 0,82 12,84 ±1,42 5,78 ± 0,99 4,35 ± 0,59 47 1388 β -Bourboneno 0,41 ± 0,10 48 1389 β - Elemeno 1,18 ± 0,23 3,51 ± 0,20
93
N° IR Composto
Raiz Caule Folhas
Hidro MEFS Hidro MEFS Hidro MEFS
Média Média Média Média Média Média
49 1390 Sativeno 0,12 ± 0,01 50 1409 α-Gurjuneno 0,56 ± 0,07 51 1416 α - Santaleno 5,45 ± 0,46 9,52 ± 1,07 52 1417 Trans-β-cariofileno 3,03 ± 0,21 8,28 ± 1,14 28,75 ± 5,45 15,85 ± 0,95 53 1430 β – Copaeno 0,07 ± 0,01 0,29 ± 0,03 54 1431 β - Gurjuneno 3,35 ± 0,07 7,46 ± 0,86 3,98 ± 0,50 55 1432 α-Bergamoteno 0,30 ± 0,06 56 1440 β-Farneseno 0,13 ± 0,04 57 1452 α - Humuleno 3,35 ± 0,07 4,23 ± 0,79 4,96 ±0,71 3,55 ± 1,11 1,16 ± 0,01 58 1457 Sesquisabineno 0,25 ± 0,00 59 1478 γ - Muuroleno 0,76 ± 0,00 60 1484 Germacreno D 14,88 ± 12,55 4,96 ± 0,82 61 1493 α-zingibereno 5,51 ± 0,93 2,09 ± 0,04 62 1500 α - Muuroleno 0,90 ± 0,30 63 1504 Cupareno 0,35 ± 0,00 64 1505 β-Bisaboleno 3,58 ± 0,79 1,26 ± 0,31 65 1513 γ - Cadineno 0,77 ± 0,00 66 1522 δ-Cadineno 1,58 ± 0,09 2,96 ± 0,87 5,89 ± 1,74 4,56 ± 0,66 4,13 ± 0,89 1,29 ± 0,22 67 1544 α - Calacoreno 1,92 ± 0,42 0,22 ± 0,03 68 1561 Nerolidol 4,89 ± 0,57 69 1582 Oxido Cariofileno 8,43 ± 0,38 11,35 ± 3,06 9,66 ± 4,01 70 1608 Humuleno epoxido II 5,14 ± 0,22 19,68 ± 0,38 71 1630 Muuorola 4,38 ± 1,57 72 1649 β - Eudesmol 1,13 ± 0,06
94
N° IR Composto
Raiz Caule Folhas
Hidro MEFS Hidro MEFS Hidro MEFS
Média Média Média Média Média Média
73 1675 Cadaleno 3,51 ± 0,54
74 2055 Abietatrieno 1,20 ± 0,71
75 2331 Ferruginol 1,62 ± 1,38