5. VEGETASJON OG BEITE I SAGFJORDEN BEITEOMRÅDE
5.4 Vegetasjon og beite i ulike delar av Sagfjorden beiteområde 39
Ao fim do experimento foram observados microrganismos comuns ao ambiente de captação da água utilizada, mas sem a presença de sinais clínicos associados a patologias ocasionadas por estes.
O uso combinado da histologia com os parâmetros hematológicos, mostrou-se eficiente na avaliação dos efeitos de ingredientes vegetais sobre a sanidade dos organismos em experimentação.
Pelo aqui apresentado, conclui-se que o farelo de soja pode ser utilizado substituindo 12% da farinha de peixe dietária, o que corresponde a 24,6% composição dietária, sem danos significativos à saúde dos juvenis de beijupirá, Rachycentron canadum.
O nível de 25% de substituição da farinha de peixe por farelo de soja (33% de inclusão), embora não tenha impactado de forma significativa no intestino distal do beijupirá e no peso médio, apresentou-se iniciando alterações no fígado desta espécie que poderiam se agravar com o maior tempo cultivo com este percentual de inclusão. Essas alterações se agravaram com maiores substituições do ingrediente.
Técnicas complementares à histologia poderiam fornecer maiores detalhes sobre os efeitos de ingredientes alternativos à proteína marinha na morfologia e fisiologia dos organismos aquáticos.
A dieta comercial utilizada neste trabalho, além de um desempenho menor dos indivíduos, mostrou impactar de forma negativa na sanidade do beijupirá, seja pela presença de fatores antinutricionais ou pelo não atendimento das necessidades nutricionais da espécie. Isto pode comprometer o sucesso dos cultivos que se iniciam no País, por não proporcionar o desempenho satisfatório aos investimentos neste negócio, além de criar uma imagem negativa acerca do verdadeiro potencial da espécie.
Mais estudos devem ser fomentados e conduzidos em busca de conhecimento sobre as reais necessidades nutricionais da espécie, melhores custos de produção comercial, susceptibilidade aos fatores antinutricionais, uma vez que em outros países o cultivo do beijupirá vem se desenvolvendo de forma tão promissora e exponencial.
REFERÊNCIAS
ALVAREZ, F.; RAZQUIN, B.; VILLENA, A.; FIERRO, P. L.; ZAPATA, A. Alterations in the peripheral lymphoid organs and differential leukocyte counts in Saprolegnia-infected brown trout, Salmo trutta fario.Veterinary Immunology and Immunopathology. v. 18, p. 181-193, 1988.
ANDRADE, T. P.; HOLANDA, M. B. C.; COELHO, M. G.; APOLINÁRIO, D. F.; ARAÚJO, P. F. R.; CAVALCALNTE, R. L.; GESTEIRA, T. C. V. Primeiro registro de infestação por Caligus sp. associada com mortalidade do beijupirá, Rachycentrum canadum, em viveiro escavado no estado do Ceará, entre junho e agosto de 2010. ano 1, n. 3, p. 3, novembro, 2010. Beijupirá News. Disponível em:
<http://www.labomar.ufc.br/images/stories/arquivos/beijupira/bn_1_3_thales.pdf>. Acesso em 01 abr. 2013. AQUAMAPS. Disponível em: <http://www.aquamaps.org/receive.php>. Acesso em: 22 mar. 2013.
ARENDT, M. D.; OLNEY J. E.; LUCY, J. A. Stomach content analysis of cobia, Rachycentron canadum, from lower Chesapeake Bay. Fishery Bulletin. v. 4, n. 99, p. 665–670, 2001.
ASSOCIAÇÃO BRASILEIRA DOS CRIADORES DE CAMARÃO. Balança comercial de Pescado Jan – Set
– 2011. Disponível em: <http://www.abccam.com.br/estatisticas>. Acesso em: 19 mar. 2013.
ASSOCIAÇÃO BRASILEIRA DOS CRIADORES DE CAMARÃO. Balança comercial de Pescados Ano 2012. Disponível em: <http://www.abccam.com.br/estatisticas>. Acesso em: 19 mar. 2013.
BAEVERFJORD, G.; KROGDAHL, Å. Development and regression of soybean meal induced enteritis in Atlantic salmon, Salmo salar L., distal intestine: a comparison with the intestines of fasted fish. Journal of fish diseases. v. 19, p. 375–387, 1996.
BAKKE-MCKELLEP, A.M.; PRESS, C. M.; BAEVERFJORD, G.; KROGDAHL, Å.; LANDSVERK, T. Changes in immune and enzyme histochemical phenotypes of cells in the intestinal mucosa of Atlantic salmon, Salmo salar L., with soybean meal-induced enteritis. Journal of Fish Diseases. v. 23, p. 115–127, 2000. BAKKE-MCKELLEP, A. M.; KOPPANG, E. O.;GUNNES, G.; SANDEN, M.; HEMRE, G-I; LANDSVERK, T.; KROGDAHL, Å. Histological, digestive, metabolic, hormonal and some immune factor responses in Atlantic salmon, Salmo salar L., fed genetically modified soybeans. Journal of Fish Diseases. v. 30, p. 65–79, February, 2007a.
BAKKE-MCKELLEP, N. M.; PENN, M. H.; SALAS, P. M.; REFSTIE, S.; SPERSTAD, S.; LANDSVERK, T.; RINGØ, E.; KROGDAHL, Å. Effects of dietary soyabean meal, inulin and oxytetracycline on intestinal
microbiota and epithelial cell stress, apoptosis and proliferation in the teleost Atlantic salmon (Salmo salar L.). British Journal of Nutrition. v. 97, n. 4, p. 699–713, April, 2007b.
BENETTI, D. Cobia aquaculture expanding in Americas, Caribbean. Global Aquaculture Advocate. p. 46–48, March/April, 2008.
BENETTI, D.; O'HANLON, B.; RIVERA, J. A.; WELCH, A. W.; MAXEY, C.; ORHUN, M. R. Growth rates of cobia (Rachycentron canadum) cultured in open ocean submerged cages in the Caribbean. Aquaculture. v. 302, p. 195–201, 2010.
BLAABJERG, K.; CARLSSON, N-G.; HANSEN-MØLLER, J.; POULSEN, H.D. Effect of heat-treatment, phytase, xylanase and soaking time on inositol phosphate degradation in vitro in wheat, soybean meal and rapeseed cake. Animal Feed Science and Technology. v. 162, p. 123–134, 2010.
BLAZER, V.; SMITH, C. Non-Infectious Diseases. In: Fish Histology and Histopathology. (MUMFORD, S.; HEIDEL, J.; SMITH, C.; MORRISON, J.; MACCONNELL, B.; BLAZER, V.) cap 7. United States Fish & Wildlife Service. p. 22, July, 2007.
47
BOWYER, J. N.; QIN, J. G.; ADAMS, L. R.; THOMSON, M. J.S.; STONE, D. A. J. The response of digestive enzyme activities and gut histology in yellowtail kingfish (Seriola lalandi) to dietary fish oil substitution at different temperatures. Aquaculture. v. 368–369, p. 19–28, 2012.
CONCIL FOR AGRICULTURAL SCIENCE AND TECHNOLOGY. Mycotoxins: Risk in plant, animal, and human systems. Ames, IA. 2003.
COMPANHIA NACIONAL DE ABASTECIMENTO. Acompanhamento da Safra Brasileira. Grãos Safra 2012/2013 sexto levantamento Março, 2013. Brasília–DF. Conab, 2013.
COLLETTE, B. B. Rachycentridae. Cobia. In CARPENTER, K. E.; NIEM, V. H. (eds.). FAO species
identification guide for fishery purposes. The living marine resources of the Western Central Pacific. Bony fishes part 2 (Mugilidae to Carangidae). FAO, Rome, 1999. v. 4, p. 2655.
CHOU, R. L.; SU, M. S.; CHEN, H. Y. Optimal dietary protein and lipid levels for juvenile cobia Rachycentron canadum. Aquaculture. v. 193, p. 8 –89, 2001.
CRAIG, S. R.; SCHWARZ, M. H.; MCLEAN, E. Juvenile cobia (Rachycentron canadum) can utilize a wide range of protein and lipid levels without impacts on production characteristics. Aquaculture. v. 261, p. 384–391, 2006.
DERSJANT-LI, Y., 2002. The use of soy protein in aquafeeds. In: Avances en Nutrición Acuícola VI. Memorias del VI Simposium Internacional de Nutrición Acuícola. 2002. Cancún, Quintana Roo, México. ESCAFFRE, A.; KAUSHIK, S.; MAMBRINI, M. Morphometric evaluation of changes in the digestive tract of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) due to fish meal replacement with soy protein concentrate. Aquaculture. v. 273, p. 127–138, 2007.
FOOD AND AGRICULTURE ORGANIZATION OF THE UNITED NATIONS. Cultured Aquatic Species Information Programme Rachycentron canadum (Linnaeus, 1766). In: Fisheries and Aquaculture
Department. Disponível em: <http://www.fao.org/fishery/culturedspecies/Rachycentron_canadum/en>. Rome,. Acesso em: 16 mai. 2011.
FOOD AND AGRICULTURE ORGANIZATION OF THE UNITED NATIONS. FAOSTAT. Disponível em <http://faostat.fao.org/site/339/default.aspx>. Acesso em: 22 mar. 2013.
FRANCIS, G.; MAKKAR, H. P. S.; BECKER, K. Antinutritional factors present in plant- derived alternate fish feed ingredients and their effects in fish. Review article, Aquaculture. v. 199, p. 197–227, 2001.
FRANKS, J. S.; GARBER, N. M.; WARREN, J. R. Stomach contents of juvenile cobia, Rachycentron canadum, from the northern Gulf of Mexico. Fishery Bulletin. v. 2, p. 94, 1996.
GATLIN, D. M.; BARROWS, F. T.; BROWN, P.; DABROWSKI, K.; GAYLORD, T. G.; HARDY, R. W.; HERMAN, E.; HU, G.; KROGDAHL, Å.; NELSON, R.; OVERTURF, K.; RUST, M.; SEALEY, W.; SKONBERG, D.; SOUZA, E. J.; STONE, D.; WILSON, R.; WURTELE, E. Expanding the utilization of sustainable plant products in aquafeeds: a review. Aquaculture Research. v. 38, p. 551–579, 2007.
GATLIN, D. M. III. Non-infectious Diseases: Nutritional Factors. In: Fish Diseases. EIRAS, J. C.; SEGNER, H.; WAHLI, T.; KAPOOR, B. G. (eds). Oxon, UK: CABI. 2008. n. 2, p. 1201–1224.
GOLDENFARB, P. B.; BOWYER, F. P.; HALL, E.; BROSIUS, E. Reproducibility in the hematology
laboratory: the microhematocrit determinations. American Journal of Clinical Pathology, Baltimore, v. 56, n. 1, p. 35–39, 1971.
HEIKKINEN, J., VIELMA, J., KEMILÄINEN, O., TIIROLA, M., ESKELINEN, P., KIURU, T., NAVIA- PALDANIUS, D., VON WRIGHT, A., Effects of soybean meal based diet on growth performance, gut
histopathology and intestinal microbiota of juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. v. 261, p. 259–268, 2006.
HOSSAIN, M. A.; JAUNCEY, K. The effects of varying dietary phytic acid, calcium and magnesium levels on the nutrition of common carp, Cyprinus carpio. In: Fish Nutrition in Practice . IVth International Symposium on Fish Nutrition and Feeding. INRA (ed.), pp. 705–715. INRA, Paris, France. 1993
HU, L.; YUN, B.; XUE, M.; WANG, J.; WU, X.; ZHENG, Y.; HAN, F. Effects of fish meal quality and fish meal substitution by animal protein blend on growth performance, flesh quality and liver histology of Japanese seabass (Lateolabrax japonicus). Aquaculture. v. 372–375, p. 52–61,2013.
KHAJEPOUR, F.; HOSSEINI, S.A. Citric acid improves growth performance and phosphorus digestibility in Beluga (Huso huso) fed diets where soybean meal partly replaced fish meal. Animal Feed Science and Technology. v. 171, p. 68–73, 2012.
KNUDSEN, D.; JUTFELT, F.; SUNDH, H.; SUNDELL, K.; KOPPE, W.; FRØKIÆR, H. Dietary soya saponins increase gut permeability and play a key role in the onset of soyabean-induced enteritis in Atlantic salmon (Salmo salar L.). British Journal of Nutrition. v. 100, p. 120–129, 2008.
KOWALSKA, A.; ZAKĘŚ, Z.; JANKOWSKA, B.; SIWICKI, A. Impact of diets with vegetable oils on the growth, histological structure of internal organs, biochemical blood parameters, and proximate composition of pikeperch Sander lucioperca (L.). Aquaculture. v. 301, p. 69–77, 2010.
LIN, S.; LUO, L. Effects of different levels of soybean meal inclusion in replacement for fish meal on growth, digestive enzymes and transaminase activities in practical diets for juvenile tilapia, Oreochromis niloticus × O. aureus. Animal Feed Science and Technology. v. 168, p. 80–87, 2011.
MACH, D.N.T.; NGUYEN, M.D.; NORTVERDT, R. Effects on digestibility and growth juvenile cobia (Rachycentron canadum) fed fish or crab silage protein. Aquaculture Nutrition. v. 16, p. 305–312, 2010. MADRID, R. M.; NUNES, A.J.P. Cultivo do Beijupirá no Vietnã e os ensinamentos para o Brasil. Revista da ABCC. Ano XV, n. 2, p. 44–48, junho de 2013.
MARSHALL, H.; FIELD, L.; AFIADATA, A.; SEPULVEDA, C.; SKOMAL, G.; BERNAL, D. Hematological indicators of stress in longline-captured sharks. Comparative Biochemistry and Physiology, Part A. v. 162, p. 121–129, 2012.
MARTÍNEZ-LLORENS, S.; BAEZA-ARIÑO, R.; NOGALES-MÉRIDA, S.; JOVER-CERDÁ, M.; TOMÁS- VIDA, A. Carob seed germ meal as a partial substitute in gilthead sea bream (Sparus aurata) diets: Amino acid retention, digestibility, gut and liver histology. Aquaculture. v. 338–341, p. 124–133, 2012.
MASSAD, C. Marine Farms Vietnam. Beijupirá News. Ano 1, n. 2, p. 4, Julho, 2010.
MORAES, F.R.; MORAES, J. R.E. Nutracêuticos na inflamação e cicatrização de peixes de interesse zootécnico In: TAVARES-DIAS, M (Org.). Manejo e sanidade de peixes em cultivo.. Embrapa Amapá. Macapá. 2009. NAGEL, F.; DANWITZ, A.; TUSCHE, K.; KROECKEL, S.; BUSSEL, C.G.J. SCHLACHTER, M.; ADEM, H.; TRESSEL, R.P.; SCHULZ, C. Nutritional evaluation of rapeseed protein isolate as fish meal substitute for juvenile turbot (Psetta maxima L.) — Impact on growth performance, body composition, nutrient digestibility and blood physiology. Aquaculture. v. 356–357, p.357–364, 2012.
NUNES, A. J. P.; MADRID, R. M.; ANDRADE, T. P. Carcinicultura marinha no Brasil: Passado, Presente e Futuro. Panorama da aquicultura. v. 21, n. 124, março/abril, 2011.
NUTRIENT REQUIREMENT OF FISH AND SHRIMP. Committee on the Nutrient Requirement of Fish and Shrimp, Board and Agriculture and Natural resources, Division on Earth and Life Studies, National Research Council of the National Academies. The National Academies Press. Washington, D.C. 2011.
OBEMEATA, O.; ADUABOBO, H. WOKOMA, E.Acute haematological response of a cichlid fish
Sarotherodon melanotheron exposed to crude oil. Journal of Toxicology and Environmental Health Sciences. v. 4, n. 9, p. 151–155, November. 2012.
49
PEREGRINO Jr., R. B. Formação e manejo de um plantel de reprodutores do beijupirá (Rachycentron canadum) em Pernambuco. 2009. 56f. Dissertação (Mestrado em Recursos Pesqueiros e Aquicultura) – Departamento de Pesca e Aquicultura, Universidade federal rural de Pernambuco, Recife, 2009.
PINTO, R. C.; NETO, H. S.; CASTRO, L. F.; VIEIRA, C. C. F.; SÁ, M. V. C.; NUNES, A. J. P. Níveis mínimos de farinha de peixe em rações para juvenis do beijupirá, Rachycentron canadum (Linnaeus, 1766) sem comprometimento do desempenho zootécnico. In: SIMPÓSIO INTERNACIONAL DE CARCINICULTURA, 10/ SIMPÓSIO INTERNACIONAL DE AQUICULTURA, 7., 2013, Natal. Anais do X SIMPÓSIO
INTERNACIONAL DE CARCINICULTURA/ VII SIMPÓSIO INTERNACIONAL DE AQUICULTURA. Natal. Associação Brasileira dos Criadores de Camarão, 2013 1 CD-ROM.
RAWLING, M. D.; MERRIFIELD, D.L.; SNELLGROVE, D.L.; KÜHLWEIN, H.; ADAMS, A.; DAVIES, S. J. Haemato-immunological and growth response of mirror carp (Cyprinus carpio) fed a tropical earthworm meal in experimental diets Fish & Shellfish Immunology. v. 32, p. 1002–1007, 2012.
REFSTIE, S.; LANDSVERK, T.; BAKKE-MCKELLEP, A.M.; RINGØ, E.; SUNDBY, A.; SHEARER, K.D.; KROGDAHL, Å. Digestive capacity, intestinal morphology, and microflora of 1-year and 2-year old Atlantic cod (Gadus morhua) fed standard or bioprocessed soybean meal. Aquaculture. v. 261, p. 269–284, 2006a. REFSTIE, S.; GLENCROSS, B.; LANDSVERK, T.; SØRENSEN, M.; LILLEENG, E.; HAWKINS,W.; KROGDAHL, Å. Digestive function and intestinal integrity in Atlantic salmon (Salmo salar) fed kernel meals and protein concentrates made from yellow or narrow-leafed lupins. Aquaculture. v. 261, p. 1382–1395, 2006b.
RESLEY, M.J.; WEBB JR., K.A.; HOLT, G.J. Growth and survival of juvenile cobia, Rachycentron canadum, at different salinities in a recirculating aquaculture system. Aquaculture. v.253, p.398–407, 2006.
RIJN, A. V.; REINA, R. D. Distribution of leukocytes as indicators of stress in the Australian swellshark, Cephaloscyllium laticeps Jason. Fish & Shellfish Immunology. v. 29, p.534–538, 2010.
ROMARHEIM, O.H.; ZHANG, C.; PENN, M.; LIU, Y.-J.; TIAN, L.-X.; SKREDE, A.; KROGDAHL, Å.; STOREBAKKEN, T. Growth and intestinal morphology in cobia (Rachycentron canadum) fed extruded diets with two types of soybean meal partly replacing fish meal. Aquaculture Nutrition. v.14, p.174–180, 2008. ROBAINA, L.; IZQUIERDO, M. S.; MOYANO, F.J.; SOCORRO, J.; VERGARA, J.M.; MONTERO, D. Increase of the dietary n-3/n-6 fatty acid ratio and addition of phosphorus improves liver histological alterations induced by feeding diets containing soybean meal to gilthead seabream, Sparus aurata. Aquaculture. v. 161, p. 281–293, 1998.
SADO, R. Y.; BICUDO, A. J. A. Dietary levamisole influenced hematological parameters of juvenile pacu, Piaractus mesopotamicus (Holmberg 1887). Journal of the World Aquaculture Society.v. 41, n. S1, February, 2010.
SAHLMANN, C.; SUTHERLAND, B.J.G.; KORTNER, T.M.; KOOP, B.F.; KROGDAHL, Å.; BAKKE, A.M. Early response of gene expression in the distal intestine of Atlantic salmon (Salmo salar L.) during the
development of soybean meal induced enteritis. Fish & Shellfish Immunology. v. 34, p. 599–609, 2013. SALZE, G.; MCLEAN, E.; BATTLE, P.R.; SCHWARZ, M.H.; CRAIG, S.R. Use of soy protein concentrate and novel ingredients in the total elimination of fish meal and fish oil in diets for juvenile cobia, Rachycentron canadum. Aquaculture. v.298, p.294–299, 2010.
SAMPAIO, L.A.; MOREIRA, C.B.; MIRANDA-FILHO, K.C.; ROMBENSO, A.N. Culture of cobia
Rachycentron canadum (L) in near-shore cages off the Brazilian coast. Aquaculture Research. v.42, p.832–834, 2011.
SANDEN, M.; BERNTSSEN, M. H. G.; KROGDAHL, Å.; HEMRE, G-I.; BAKKE-MCKELLEP, A-M.An examination of the intestinal tract of Atlantic salmon, Salmo salar L., parr fed different varieties of soy and maize. Journal of Fish Diseases. v. 28, p. 317–330, 2005.
SARDENBERG, B.; BENETTI, D.; BROWN, P.; FARKAS, D.; MIRALAO, S.; DAVIS, D.; DAUGHERTY, Z.; HOENIG, R.; WELCH, A.; STIEGLITZ, J. Maturação, desova, larvicultura e produção comercial de
alevinos de beijupirá (Rachycentron canadum) - Tecnología desenvolvida e disponível. Beijupirá News. Ano 1, n. 2, p. 3, Julho, 2010.
SEALEY, W. M.; BARROWS, F. T.; SMITH, C. E.; OVERTURF, K.; LAPATRA, S. E. Soybean meal level and probiotics in first feeding fry diets alter the ability of rainbow trout Oncorhynchus mykiss to utilize high levels of soybean meal during grow-out. Aquaculture. v. 293, p. 195–203, 2009.
SHAFFER, V. R.; NAKAMURA, E. L. Synopsis of biological data on the cobia Rachycentron canadum (Pisces: Rachycentridae). Technical Report. National Oceanic and Atmospheric Administration – NOAA. National Marine Fisheries Service 82, FAO Fisheries Synopsis 153. December. 1989.
SILVA, F. P.; SORIANO, F.G. Neutrophils recruitment during sepsis: critical points and crossroads. Frontiers in Bioscience. v. 14, n. 12, p. 4464–4476, 2009.
TACON, A. G. J.; METIAN, M. Global overview on the use of fish meal and fish oil in industrially compounded aquafeeds: Trends and future prospects. Aquaculture. v. 285, p. 146–158, 2008.
TAVARES-DIAS, M.; FAUSTINO, C. D. Parâmetros hematológicos da Tilápia-do-Nilo Oreochromis niloticus (Cichlidae) em cultivo extensivo. Ars Veterinária, n. 14, p. 254–63,1998.
TAVARES-DIAS, M.; TENANI, R. A.; GIOLI, L. D.; FAUSTINO, C. D. Características hematológicas de teleósteos brasileiros. II. Parâmetros sangüíneos do Piaractus mesopotamicus Holmberg (Osteichthyes, Characidae) em policultivo intensivo. Revista brasileira de Zoologia. v. 16, n. 2, p. 423–431, 1999.
TAVARES-DIAS, M.; MORAES, F. R. Características hematológicas da Tilapia rendalli Boulenger, 1986 (Osteichthyes: Cichlidae) capturada em ―Pesque-Pague‖ de Franca, São Paulo, Brasil. Bioscience J. v. 1, n. 19, p. 103-110, 2003.
TAVARES-DIAS, M.; FERREIRA, J. S.; AFFONSO, E. G.; ONO, E. A.; MARTINS, M. L. Toxicity and effects of copper sulfate on parasitic control and hematological response of tambaqui Colossoma macropomum Boletim Instituto de Pesca, São Paulo, v. 37, n. 4, p. 355–365, 2011.
URÁN, P.A.; SCHRAMA, J.W.; ROMBOUT, J.H.W.M.; OBACH, A.; JENSEN, L.; KOPPE, W.; VERRETH, J.A.J. Soybean meal induced enteritis in Atlantic salmon (Salmo salar L.) at different temperatures.
Aquaculture Nutrition. v. 14, p. 324–330, 2008.
VÁZQUEZ, G. R.; GUERRERO, G. A. Characterization of blood cells and hematological parameters in Cichlasoma dimerus (Teleostei, Perciformes). Tissue and Cell. v. 39, p. 151–160, 2007.
VANDENBERG, G.W.; SCOTT, S.L.; SARKER, P.K.; DALLAIRE, V.; NOÜE, J. Encapsulation of microbial phytase: Effects on phosphorus bioavailability in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Animal Feed Science and Technology. v. 169, p.230–243, 2011.
VENOLD, F. F.; PENN, M.H.; THORSEN, J.; GU, J.; KORTNER, T.M.; KROGDAHL, Å.; BAKKE, A.M. intestinal fatty acid binding protein (fabp2) in atlantic salmon (salmo salar): localization and alteration of expression during development of diet induced enteritis. Comparative Biochemistry and Physiology Part A. v. 164, n. 1, p. 229–240, 2013.
WIEFELS, R. Comercialização: A chave do sucesso da maricultura do beijupirá. Beijupirá News. Ano 2, n. 4, Janeiro, 2011.
YUE, Y.R.; ZHOU, Q.C. Effect of replacing soybean meal with cottonseed meal on growth, feed utilization, and hematological indexes for juvenile hybrid tilapia, Oreochromis niloticus × O. aureus. Aquaculture. v. 284, p.185–189, 2008.
ZHOU, Q.; TAN, B.; MAI, K.; LIU, Y. Apparent digestibility of selected feed ingredients for juvenile cobia Rachycentron canadum. Aquaculture. v. 241, p. 441–451, 2004.