• No results found

Outline of the Experimental Protocol

In document CM_1996_L_3.pdf (4.276Mb) (sider 52-64)

Diante das dificuldades enfrentadas pelos pequenos agricultores, no que tange a baixa produtividade das culturas, o preparado de nódulos é uma alternativa de baixo custo e promissora. É capaz de promover o aumento de produção sob condições de escassez de recursos, entretanto vale observar que é um ganho pequeno, frente aos fertilizantes químicos ou mesmo o inoculante comercial que adota bactérias selecionadas e em alta concentração. As condições de fertilidade do solo antes de plantio é um fator que influência o comportamento das plantas perante o preparado de nódulos. Solos mais ricos nutricionalmente, como exemplo, aquele com altos teores de matéria orgânica tem um ganho menor que um solo pobre em nutrientes.

Estudos complementares se fazem necessários para avaliar as melhores densidades de plantio para obtenção de maior quantidade de nódulos para o preparo desse inoculante alternativo, visando ocupar a menor área e reduzindo o trabalho do agricultor. O armazenamento dos nódulos em freezer de uma safra para outra é algo a ser estudado, pois permitiria ao agricultor iniciar o cultivo antecipadamente caso tivesse os nódulos já coletados em um ano anterior.

REFERÊNCIAS

AUNG, T. T. et al. Co-inoculation effects of Bradyrhizobium japonicum and Azospirillum sp. on competitive nodulation and rhizosphere eubacterial community structures of soybean under rhizobia-established soil conditions. African Journal of Biotechnology, v. 12, p. 2850–2862, 2013.

AMADOU, C. et al. Genome sequence of the β-Rhizobium Cupriavidus taiwanensis and comparative genomics of rhizobia. Genome Research, v. 18, n. 9, p. 1472–1483, 9 2008. ALCANTARA, R. M. C. M. et al. Eficiência simbiótica de progenitores de cultivares brasileiras de feijão-caupi. Revista Ciencia Agronomica, v. 45, n. 1, p. 1–9, 2014. ALMEIDA, M. M. T. B. et al. Fertilizantes de leguminosas como fontes alternativas de nitrogênio para produção orgânica de alface. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, v. 43, n. 6, p. 675-682, 2008.

ALMEIDA, A. L. G. et al. Produtividade do feijão-caupi cv BR 17 Gurguéia inoculado com bactérias diazotróficas simbióticas no Piauí. Revista Brasileira de Ciências Agrárias, v. 5, n. 3, p. 364-369, 2010.

ALVES, J. M. A. et al. Avaliação agroeconômica da produção de cultivares de feijão-caupi em consórcio com cultivares de mandioca em Roraima. Revista Agro@mbiente On-Line, v. 3, n. 1, p. 15–30, 2009.

BEJARANO, A. et al. Vigna unguiculata is nodulated in Spain by endosymbionts of Genisteae legumes and by a new symbiovar (vignae) of the genus Bradyrhizobium. Systematic and Applied Microbiology, v. 37, n. 7, p. 533–540, 2014.

BEZERRA, A. A. C. et al. Comportamento morfoagronômico de feijão-caupi, cv. BRS Guariba, sob diferentes densidades de plantas. Revista de Ciências Agrárias, v. 55, n. 3, p. 184-189, 2012.

BEZERRA, A. A. C. et al. Morpho-physiological and productive biometry in semi-erect cultivars of the cowpea under different plant populations. Revista Ciência Agronômica, v. 48, n. 4, p. 625-630, 2017. Disponível em: http://dx.doi.org/10.5935/1806-6690.20170072. Acesso em: 20 jan. 2018.

BOUKAR, O. Genomic tools in cowpea breeding programs: status and perspectives. Frontier in Plant Science, v. 7, p. 1-13, 2016. Disponível em:

https://doi.org/10.3389/fpls.2016.00757. Acesso em: 22 jan. 2018.

BOAKYE, E. Y. et al. Characterization and diversity of rhizobia nodulating selected tree legumes in Ghana. Symbiosis, v. 69, p. 89–99, 2016.

CARNOL, M.; INESON, P.; DICKINSON, A. L. Soil solution and cations influenced by (NH4)2SO4 deposition in a coniferous forest. Environmental Pollution, v. 97, p. 1-10, 1997.

CAMARGO, J. A.; ALONSO, A. Ecological and toxicological effects of inorganic nitrogen pollution in aquatic ecosystems: A global assessment. Environment International, v. 32, n. 6, p. 831–849, 2006.

CARVALHO, A. F. U. et al. Nutritional ranking of 30 Brazilian genotypes of cowpeas including determination of antioxidant capacity and vitamins. Journal of Food Composition and Analysis, v. 26, p. 81–88, 2012. Disponível em:

https://doi.org/10.1016/j.jfca.2012.01.005. Acesso em: 11 fev. 2018.

CEREZINI, P. et al. Gas Exchanges and Biological Nitrogen Fixation in Soybean under Water Restriction. American Journal of Plant Sciences, v. 5, p. 4011-4017, 2014. CEASA. Boletim diário. Disponível em: http://www.ceasa-ce.com.br/index.php/boletim- diario. Acesso em 03 de julho de 2018.

COSTA, F. E. D. C.; MELO, I. S. Endophytic and rhizospheric bacteria from Opuntia ficus- indica mill and their ability to promote plant growth in cowpea , Vigna unguiculata ( L .) Walp. African Journal of Microbiology Research, v. 6, n. 6, p. 1345–1353, 2012.

COMPANHIA NACIONAL DE ABASTECIMENTO - Acompanhamento da safra brasileira de grãos | v. 5 - Safra 2017/18, n. 4 - Quarto levantamento, janeiro 2018. Disponível em: <http://www.conab.gov.br/OlalaCMS/uploads/arquivos/18_01_11_14_17_49_graos_4o_leva ntamento.pdf. Acesso em: 16 jan. 2018.

CRUZ, C. D. GENES - Software para análise de dados em estatística experimental e em genética quantitativa. Acta Scientiarum - Agronomy, v. 35, n. 3, p. 271–276, 2013. CHEN, X. et al. CGKB: an annotation knowledge base for cowpea (Vigna unguiculata L.) methylation filtered genomic genespace sequences. BMC Bioinformatics, v. 8, 129. 2007. DAHAN, O. et al. Nitrate leaching from intensive organic farms to groundwater. Hydrology and Earth System Sciences, v. 18, p. 333-341, 2014.

EPSTEIN, E.; BLOOM, A. J. Nutrição mineral de plantas: princípios e perspectivas. 2. ed. Londrina: Planta, 2006. 403 p.

ELSHEIKH, E. A. E. Effects of salt on rhizobia and bradyrhizobia: a review. Annals of Applied Biology, v. 132, n. 3, p. 507-524, 1998.

FALKOWSKI, P. G.; FENCHEL, T.; DELONG, E. F. The microbial engines that drive Earth’s biogeochemical cycles. Science, v. 320, n. 5879, p. 1034-1039, 2008. Disponível em: doi:10.1126/science.1153213 pmid:18497287. Acesso em: 20 fev. 2018.

FOOD AND AGRICULTURE ORGANIZATION OF THE UNITED NATIONS. Disponível em: <http://www.fao.org/faostat/en/#data/QC/visualize> Acesso em: 20 Jan. 2018.

FIGUEIREDO, M. V. B. et al. Bactérias promotoras do crescimento de plantas: estratégia para uma agricultura sustentável. In: FIGUEIREDO, M. V. B. et al. Biotecnologia aplicada à agricultura: textos de apoio e protocolos experimentais. Brasília: Embrapa Agrobiologia, 2010. Parte 4, Cap. 1, p. 387- 414.

FLUCKIGER, W.; BRAUN, S. Nitrogen deposition in Swiss forests and its possible relevance for leaf nutrient status, parasite attacks and soil acidification. Environmental Pollution, v. 102, p. 69-76, 1998.

FREIRE, J. R. J; VERNETTI, F. J. A. Pesquisa com soja, a seleção de rizóbio e produção de inoculantes no Brasil. Pesquisa Agropecuária Gaúcha, v. 5, n. 1, 1999.

FREIRE FILHO, F. R.; LIMA, J. A. A.; RIBEIRO, V. Q. Feijão-caupi: avanços tecnológicos. Brasília, DF: Embrapa Informação Tecnológica, 2005. 519 p.

FREIRE FILHO, F. R. et al. Feijão-caupi no Brasil: produção, melhoramento genético, avanços e desafios. 1. ed. Teresina: Embrapa Meio Norte, 2011.

FREITAS, A. D. S. et al. Biological nitrogen fixation in tree legumes of the Brazilian semi- arid caatinga. Journal of Arid Environments, v. 74, n. 3, p. 344–349, 2010. Disponível em: http://doi:10.1016/j.jaridenv.2009.09.018. Acesso em: 17 mai. 2018.

FUNDAÇÃO CEARENSE DE METEOROLOGIA E RECURSOS HÍDRICOS. Calendário das Chuvas no Estado do Ceará, 2017. Disponível em:

<http://www.funceme.br/index.php/areas/23-monitoramento/meteorológico/406-chuvas- diárias>. Acesso em: 19 jul. 2018.

GAD, N.; KANDIL, H. Evaluate the effect of Molybdenum and Different Nitrogen Levels on Cowpea (Vigna Anguiculata). Journal of Applied Sciences Research, v. n. 3, p. 1490-1497, 2013.

GARBISU, C.; ALKORTA, I. Phytoextraction: a cost-efective plant-based technology for the removal of metals from the environment. Bioresource Technology, v. 77, p. 229-236, 2001. GAN, H. et al. Phosphorus and nitrogen physiology of two contrasting poplar genotypes when exposed to phosphorus and/or nitrogen starvation. Tree Physiology, v. 36, n. 1, p. 22– 38, 2016.

GORDON, A. J. et al. Nodule formation and function, in: LEA, P. J. MOROT-GAUDRY, J. F. (Eds.), Plant Nitrogen, Springer-Verlag/Institute National de la Recherche Agronimique, Berlin/Paris, 2001, p. 101–138.

GUALTER, R. M. R. et al. Eficiência agronômica de estirpes de rizóbio em feijão-caupi cultivado na região da Pré Amazônia maranhense. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v. 46, n. 3, p. 303-308, 2011. Disponível em: http://dx.doi.org/10.1590/S0100-

204X2011000300011. Acesso em: 19 jul. 2018.

GUIMARÃES, A. A.; et al. Genetic and symbiotic diversity of agricultural soils in the western amazon nitrogen-fixing bacteria isolated from by using cowpea as the trap plant. Applied Environmental Microbiology, v. 78, n. 18, p. 6726–6733, 2012.

HANSCH, R.; MENDEL, R. R. Physiological functions of mineral micronutrients (Cu, Zn, Mn, Fe, Ni, Mo, B, Cl). Current Opinion in Plant Biology, v. 12, p. 259–266, 2009.

HALL, A. E. Phenotyping cowpeas for adaptation to drought. Frontier in Physiology, v. 3, p. 1-8, 2012. Disponível em: http://dx.doi.org/10.3389/fphys.2012.00155. Acesso em: 14 mai. 2018.

HERRIDGE, D.; ROSE, I. Breeding for enhanced nitrogen fixation in crop legumes. Field Crops Research, v. 65, n. 2–3, p. 229–248, 2000.

HYMOWITZ, T.; VERNETTI, F. J.; SHANDS, J. The Brazilian National Soybean Program. Soybean Digest, v. 8, n. 28, p. 62-65, 1968.

HOFFMANN, R. A agricultura familiar produz 70% dos alimentos consumidos no Brasil?. Segurança Alimentar e Nutricional, v. 21, n. 1, p. 417–421, 2014.

HUNGRIA, M.; VARGAS, M. A. T.; ARAÚJO, R. S. Fixação biológica de nitrogênio em feijoeiro. In: VARGAS, M. A. T; HUNGRIA, M. Biologia dos solos dos Cerrados, Planaltina: Embrapa – CPAC, 1997. p. 187-258.

INDRASUMUNAR, A.; DART, P. J.; MENZIES, N. W. Symbiotic effectiveness of Bradyrhizobium japonicum in acid soils can be predicted from their sensitivity to acid soil stress factors in acidic agar media. Soil Biology and Biochemistry, v. 43, n. 10, p. 2046- 2052, 2011.

JARAMILLO et al. Symbiotic nitrogen-fixing bacterial populations trapped from soils under agroforestry systems in the Western. Amazon Scientia Agricola, v. 70, n. 6, p. 397-404, 2013.

KANT, S.; BI, Y. M.; ROTHSTEIN, S. J. Understanding plant response to nitrogen limitation for the improvement of crop nitrogen use efficiency. Journal of Experimental Botany, v. 62, n. 4, p. 1499–1509, 2011.

KACHARE, D. P.; CHAVAN, J. K.; KADAM, S. S. Nutritional quality of some improved cultivars of cowpea. Plant Foods for Human Nutrition, v. 38, p. 155-162 1988.

KARTHIK, C. et al. Isolation and characterization of multi-potential Rhizobium strain ND2 and its plant growth-promoting activities under Cr (VI) stress. Agronomy and Soil Science, v. 63, p. 1058–1069, 2017.

KOSLEY, G. et al. Genetic characterization and diversity of rhizobium isolated from root nodules of mid-altitude climbing bean (Phaseolus vulgaris L.) varieties. Frontiers in Microbiology, v. 9, p. 1-12, 2018.

KBATOUNIAN, C. A. Produção de alimentos para consumo doméstico no Paraná: caracterização e culturas alternativas. Londrina: IAPAR, 1994. 155 p. (Circular, 81).

LAHROUNI, M. et al. Microcystin-tolerant Rhizobium protects plants and improves nitrogen assimilation in Vicia faba irrigated with microcystin-containing waters. Environmental Science and Pollution Research, v. 23, n. 10, p. 10037–10049, 2016.

LEITE, J. et al. Genomic identification and characterization of the elite strains Bradyrhizobium yuanmingense BR 3267 and Bradyrhizobium pachyrhizi BR 3262

recommended for cowpea inoculation in Brazil. Brazilian Journal of Microbiology, p. 1-11, 2017.

LI, D. et al. Effects of low nitrogen supply on relationships between photosynthesis and nitrogen status at different leaf position in wheat seedlings. Plant Growth Regulation, v. 70 n. 3, p. 257–263, 2013.

LOPES, N. F.; LIMA, M. G. S. Fisiologia da produção. 1. ed. Viçosa: Editora UFV, 2015. 492 p.

MARÉCHAL, R.; MASCHERPA, J. M; STAINIER, F. Étude taxonomique d’um roupe complexe d’espèces de genres Phaseolus et Vigna (Papilionaceae) sur la base de donneés morplhologiques et polliniques, traitées par l’analyse informatique. Boissiera, n. 28, p.1-273, 1978.

MATOS FILHO, C. H. A. et al. Potencial produtivo de progênies de feijão-caupi com arquitetura ereta de planta. Ciência Rural, v. 39, n. 2, p. 348–354, 2009.

MALAMY, J. E. Intrinsic and environmental response pathways that regulate root system architecture. Plant Cell & Environment, v. 28, n. 1, p. 67–77, 2005.

MARTINS, L. M. V. et al. Contribution of biological nitrogen fixation to cowpea: a strategy for improving grain yield in the semi-arid region of Brazil. Biology and Fertility of Soils, v. 38, p. 333–339, 2003.

MARINHO, R. C. N. et al. Field performance of new cowpea cultivars inoculated with efficient nitrogen‑fixing rhizobial strains in the Brazilian Semiarid. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v.49, n.5, p.395-402, 2014.

MARINHO, R. C. N. et al. Symbiotic and agronomic efficiency of new cowpea rhizobia from Brazilian Semi-Arid. Bragantia, v. 76, n. 2, p. 273-281, 2017.

MELLONI, R. et al. Eficiência e diversidade fenotípica de bactérias diazotróficas que nodulam caupi [Vigna unguiculata (L) Walp] e feijoeiro (Phaseolus vulgaris L.) em solos de mineração de bauxita em reabilitação. Revista Brasileira de Ciência do Solo, v. 30, p. 235- 246, 2006.

MISHRA, R. P. N. et al. Genetic diversity of Mimosa pudica rhizobial symbionts in soils of French Guiana: investigating the origin and diversity of Burkholderia phymatum and other beta-rhizobia. FEMS Microbiology Ecology, v. 79, p. 487-503, 2012.

MOUSINHO, F. E. P.; ANDRADE JÚNIOR, A. S.; FRIZZONE, J. A. Viabilidade econômica do cultivo irrigado do feijão-caupi no Estado do Piauí. Acta Scientiarum Agronomy, v. 30, n. 1, p. 139-145, 2008. Disponível em:

http://dx.doi.org/10.4025/actasciagron.v30i1.1165. Acesso em: 14 mai. 2018.

MOREIRA, Fátima Maria de Souza; SIQUEIRA, José Osvaldo. Microbiologia e bioquímica do solo. 2. ed. Lavras, Editora UFLA, 2006. 729 p.

MOREIRA, F. M. S. Bactérias fixadoras de nitrogênio. In: MOREIRA, F. M. M.; SIQUEIRA, J. O.; BRUSAARD, L. (eds) Biodiversidade do solo em ecossistemas brasileiros. UFLA, Lavras, 2008, p. 768.

MOREIRA, F. M. S.; SILVA, K.; NÓBREGA, R. S. A.; CARVALHO, F. Bactérias diazotróficas associativas: diversidade, ecologia e potencial de aplicações. Comunicata Scientiae, v. 1, n. 2, p. 74-99, 2010.

MUCHERO, W.; EHLERS, J. D.; ROBERTS, P. A. Seedling stage drought-induced

phenotypes and drougth-responsive genes in diverse cowpea genotypes. Crop Science, v. 48, n. 10, p. 541-552, 2008. Disponível em: http://doi.org/10.2135/cropsci2007.07.0397. Acesso em: 22 mar. 2018.

NASCIMENTO, J. L. Crescimento e assimilação de carbono em plantas jovens de Attalea funifera Mart. submetidas ao sombreamento e ao estresse hídrico. 2009. 110 f.

Dissertação (Mestrado em Produção Vegetal) – Universidade Estadual de Santa Cruz, Ilhéus, 2009.

NORRIS, D. O. Acid production by Rhizobium - a unifying concept. Plant and Soil, v. 22, p. 143-166, 1965.

NORRIS, D. O.; DATE, R. A. Legume bacteriology. In: SHAM, N. H.; BRYAN, W. W. (Ed.). Tropical pasture research: principles and methods. Hurley: Common wealth Bureau of Pastures and Field Crops, 1976. p.134‑174. (Bulletin, 51)

OJWANG, L. O. et al. Polyphenolic extracts from cowpea (Vigna unguiculata) protect colonic myofibroblasts (CCD18Co cells) from lipopolysaccharide (LPS)- induced

inflammation–modulation of microRNA 126. Food & Function, v. 6, n. 1, p. 146–154, 2015. Disponível em: https://doi.org/10.1039/c4fo00459k. Acesso em: 19 mar. 2018.

OLIVEIRA, A. P. et al. Rendimento de feijão-caupi cultivado com esterco bovino e adubo mineral. Horticultura Brasileira, v. 19, n. 1, p.81-84, 2001. Disponível em:

http://dx.doi.org/10.1590/S0102-05362001000100017. Acesso em: 09 jun. 2018.

OLIVEIRA, E. et al. Descrição de cultivares locais de feijão-caupi coletados na microrregião Cruzeiro do Sul, Acre, Brasil. Acta Amazonica, v. 45, n. 3, p. 243 – 254, 2015. Disponível em: http://dx.doi.org/10.1590/1809-4392201404553. Acesso em: 04 jul. 2018.

OLIVEIRA, W. J. et al. Leaf gas exchange in cowpea and CO2 efflux in soil irrigated with saline water. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental, v. 21, n. 1, p. 32-37, 2017. Available from <http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1415- 43662017000100032&lng=en&nrm=iso>. access on 28 June 2018.

http://dx.doi.org/10.1590/1807-1929/agriambi.v21n1p32-37.

PADULOSI, S.; NG N. Q. Origin taxonomy, and morphology of Vigna unguiculata (L.) Walp. In: SINGH, B .B.; MOHAN, R.; DASHIELL, K. E; JACKAI, L. E. N., eds. Advances in Cowpea Research. Tsukuba; IITA JIRCAS, 1997. p. 1-12.

PAL, M. et al. Effects of elevated CO2and nitrogen on wheat growth and photosynthesis. Biologia Plantarum, v. 49 n. 3, p. 467–470, 2005.

PONTES, J. S. et al. Diversity of arbuscular mycorrhizal fungi in Brazil’s Caatinga and experimental agroecosystems. Biotropica, v. 49, n. 3, p. 413–427, 2017.

PRELL, J.; POOLE, P. Metabolic changes of rhizobia in legume nodules. Trends Microbiology, v.14, p. 161–168, 2006.

QUIN, F. M. Importance of cowpea. SINGH, B. B. et al. (ed.) In: Advances in Cowpea Research. Hong Kong, Colorcraft, p. 10-12. 1997, 375 p.

RAUN, W. R.; JOHNSON, G. V. Improving nitrogen use efficiency for cereal production. Agronomy Journal, v. 91, p. 357-363, 1999.

RYAN, R. P. et al. Bacterial endophytes : recent developments and applications. FEMS Microbiology, v. 278, p. 1–9, 2007.

RICHETTI, A.; MELO, C. L. P. Viabilidade econômica da cultura do feijão-comum, safra da seca de 2016, em Mato Grosso do Sul. - Portal Embrapa. Disponível em:

<https://www.embrapa.br/busca-de-publicacoes/-/publicacao/1037433/viabilidade- economica-da-cultura-do-feijao-comum-safra-da-seca-de-2016-em-mato-grosso-do-sul>. Acesso em: 22 jul. 2018.

ROCHA, B. M. Prática alternativa de inoculação de sementes de feijoeiro (Phaseolus vulgaris, cv. Ouro Vermelho) com de estirpes rizobianas localmente adaptadas. 2013. 52 f. Dissertação (Mestrado em Ciências) Instituto de Agronomia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, 2013.

RUMJANEK, N. G.; MARTINS, L. M. V.; XAVIER, G. R.; NEVES, M. C. P. Fixação biológica de nitrogênio. In: FREIRE FILHO, F.R.; ARAUJO LIMA, J.A.; SILVA, P.H.S.; RIBEIRO, V.Q. (Ed.). Feijão‑caupi: avanços tecnológicos. Brasília: Embrapa Informação Tecnológica, 2005. p. 279‑335.

RUMJANEK, N. G. et al. Prática alternativa para inoculação de sementes de feijão-caupi a partir de um preparado de raízes finas noduladas. Seropédica: Embrapa Agrobiologia, 2017. 4 p. (Comunicado técnico, 145).

RUFINI, M. et al. Symbiotic efficiency and identification of rhizobia that nodulate cowpea in a Rhodic Eutrudox. Biology and Fertility of Soils, v. 50, p. 115–122, 2014.

RUDNICK, P. et al. Regulation of nitrogen fixation by ammonium in diazotrophic species of proteobacteria. Soil Biology and Biochemistry, v. 29, n. 5/6, p. 831-841, 1997.

SALINAS-GAMBOA, R. et al. New observations on gametogenic development and reproductive experimental tools to support seed yield improvement in cowpea [Vigna unguiculata (L.) Walp.]. Plant Reproduction, v. 29, p. 165-177, 2016. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s00497-015-0273-3. Acesso em: 19 mar. 2018.

SARR, P. S. et al. Phylogenetic Diversity and Symbiotic Effectiveness of Root-Nodulating Bacteria Associated with Cowpea in the South-West Area of Japan. Microbes and

SANGINGA, N. et al. Persistence and effectiveness of rhizobia nodulating promiscuous soybeans in moist savanna zones of Nigeria. Applied Soil Ecology, v. 3, n. 3, p. 215–224, 1996.

SILVEIRA J. A. G.; COSTA, R. C. L.; OLIVEIRA, J. T. A. Drough-induced effects and recovery of nitrate assimilation and nodule activity in cowpea plants inoculated with

Bradyrhizobium spp. under moderate nitrate level. Brazilian Journal of Microbiology, v. 32, n. 3, p. 187-194, 2001. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S1517-83822001000300005. Acesso em: 19 jun. 2018.

SILVA, J. A. L.; NEVES, J. A. Componentes de produção e suas correlações em genótipos de feijão-caupi em cultivo de sequeiro e irrigado. Revista Ciência Agronômica, v. 42, n. 3, p. 702–713, 2011.

SILVA JÚNIOR, E. B. et al. Nodulação e produção de feijão-caupi em resposta à inoculação com diferentes densidades rizobianas. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v. 49, n. 10, p. 804–812, 2014.

SILVA, G. C. et al. Rendimento de grãos secos e componentes de produção de genótipos de feijão-caupi em cultivo irrigado e de sequeiro. Revista Agro@mbiente on-Line, v. 10, n. 4, p. 342–350, 2016.

SOARES, A. L. L. et al. Eficiência agronômica de rizóbios selecionados e diversidade de populações nativas nodulíferas em perdões (MG). I – caupi. Revista Brasileira de Ciência do Solo, v. 30, p. 795-802, 2006.

SOARES, B. L. et al. Cowpea symbiotic efficiency, pH and aluminum tolerance in nitrogen- fixing bacteria. Scientia Agricola, v. 71, n. 3, p. 171-180, 2014.

SOARES, C. S. Eficiência de estirpes de rizóbios no rendimento e qualidade fisiológica de sementes de feijão-caupi (Vigna unguiculata L.) Walp.). 91 f. Tese (Doutorado). Universidade Federal da Paraíba, Programa de Pós-Graduação em Agronomia, 2007. SOUZA, P. J. O. P. et al. Cowpea leaf area, biomass production and productivity under different water regimes in Castanhal, Pará, Brazil. Revista Caatinga, v. 30, n. 3, p. 748 – 759, 2017.

STEFAN, A. Genetic diversity and structure of Rhizobium leguminosarum populations

associated with clover plants are influenced by local environmental variables. Systematic and Applied Microbiology, v. 41, p. 251–259, 2018.

TAIZ, Lincoln; ZEIGER, Eduardo. Fisiologia Vegetal. 5. Ed. Porto Alegre: Artmed, 2012. 954 p.

TATAGIBA, S. D. et al. Limitações fotossintéticas em folhas de plantas de tomateiro submetidas a crescentes concentrações salinas. Engenharia na Agricultura, v. 22, n. 2, p. 138-149, 2014.

TSVETKOVA, G. E.; GEORGIEV, G. I. Effect of phosphorus nutrition on the nodulation, nitrogen fixation and nutrient-use efficiency of Bradyrhizobium japonicum – soybean (Glycine max L. Merr.) symbiosis. Bulgarian Journal of Plant Physiology, v. Special Is, p. 331–335, 2003.

TREHAN, I. et al. Common beans and cowpeas as complementary foods to reduce

environmental enteric dysfunction and stunting in Malawian children:study protocol for two randomized controlled trials. Trials, v. 16, p. 1-12, 2015. Disponível em:

https://dx.doi.org/10.1186/s13063-015-1027-0. Acesso em: 19 jun. 2018.

UYANÖZ, R.; KARACA, U. Effects of different salt concentrations and Rhizobium inoculation (native and Rhizobium tropici CIAT899) on growth of dry bean (Phaseolus vulgaris L.). European Journal of Soil Biology, v. 47, p. 387-391, 2011.

VALENTINE, A. J.; KLEINERT, A.; BENEDITO, V. A. Adaptive strategies for nitrogen metabolism in phosphate deficient legume nodules. Plant Science, v. 256, n. 1, p. 46–52, 2017.

VERDECOURT, B. Studies in the Leguminosae - .Papilionoideae for flora of tropical East Africa. Kew Bulletin, v. 24, p. 507-569, 1970.

WIGNARAJAH, K. Growth response of Phaseolus vulgaris to varying salinity regimes. Environmental and Experimental Botany, v. 30, n. 2, p. 141-147, 1990.

WINGLER, A. et al. The role of sugars in integrating environmental signals during the regulation of leaf senescence. Journal of Experimental Botany, v. 57, n. 2, p. 391–399, 2006.

WUEBBLES, D. J. Nitrous oxide: no laughing matter. Science, v. 326, p. 56–57, 2009. ZILLI, J. E. et al. Contribuição de estirpes de rizóbio para o desenvolvimento e produtividade de grãos de feijão-caupi em Roraima. Acta Amazonica, v. 39, n. 4, p.749-758, 2009.

In document CM_1996_L_3.pdf (4.276Mb) (sider 52-64)