Normagenter og internaliserte normer

De modo geral, a detecção de proteínas nas amostras dos tecidos originais foi maior do que nos tecidos de calos. Esse fato pode ter sido ocasionado pela diferença do material ou pela metodologia de extração utilizada, a qual foi maceração em nitrogênio líquido e centrifugação. A maceração pode ser um método ineficaz de extração proteica, e por isso a digestão tríptica não foi capaz de fornecer peptídeos que fossem similares aos depositados no banco de dados. A extração foi a mesma utilizada nos tecidos de calos, mas para o tecido original pode-se sugerir a integração do método de maceração e centrifugação com outras metodologias que tornem a extração mais eficiente. Contudo a análise proteômica mostrou-se relevante na caracterização dos calos e dos tecidos, pois mostrou a eficiência da extração em cada tecido, identificou peptídeos relacionados a proteínas únicas de cada tipo de amostra, e principalmente, identificou proteínas comuns entre eles. A abordagem também possibilitou visualizar possíveis papéis fisiológicos das proteínas dos calos, as quais apresentaram papéis principalmente relacionados à defesa. Esse fato pode ter relação com a função dos calos na natureza, o qual é produzido em situações de injúria.

O estudo proteômico, aliado à análise eletroforética e à atividade hemaglutinante, mostraram fortes indício da presença da lectina frutapina nos tecidos de calos, reforçando a importância da presença de uma lectina manose- ligante no desenvolvimento desse tecido.

O estudo desenvolvido pode ser complementado com outras perspectivas, como a visualização deste painel proteico por eletroforese bidimensional, além de sugerir a otimização de métodos de extração, investigação de outros tecidos, investigação de DNA e RNA de moléculas de interesse no tecido, ensaios de atividade biológica, dentre outros.

6. CONCLUSÃO

Os resultados obtidos neste trabalho mostram a eficiência na metodologia de produção de calos caulinares e foliares de A. incisa, apesar das dificuldades apresentadas para espécies lenhosas, pois conseguiu-se um percentual de produção de 88%. A quantificação de proteínas totais mostrou que os explantes de caule e folha apresentam maior quantidade de proteínas quando comparados com os calos, e esse fato pode estar relacionado com o grau de diferenciação do tecido. A análise histológica não revelou diferenças entre os calos caulinares e foliares, contudo, foi útil para mostrar que as células apresentavam características de calos friáveis e em pleno crescimento. A abordagem proteômica permitiu identificar peptídeos que apresentam similaridade com proteínas vegetais descritas, e identificou maior número de proteínas nos calos do que nos tecidos originais. Pode- se destacar a presença de uma lectina semelhante à KM+ em ambas as amostras de calos, o que pode ser um indício da presença de frutapina nos calos. Essa suspeita foi reforçada com os ensaios preliminares de eletroforese e atividade hemaglutinante, o que leva a crer que essa lectina apresenta um importante papel fisiológico no desenvolvimento desse tecido. Além disso, a proteômica permitiu a detecção de diversas proteínas relacionadas à defesa vegetal, e esse fato pode ter relação com o papel dos calos na natureza, pois são tecidos encontrados em situações de injúria. Portanto, o presente trabalho serviu como um passo inicial para o entendimento da bioquímica e fisiologia dos calos de A. incisa L., e fornece uma base para estudos mais aprofundados desse tecido e das proteínas que o constituem.

REFERÊNCIAS

ABDON, A. P. V.; VASCONCELOS, R. P.; CASTRO, C. A.; GUEDES, M. M.; TOMÉ, A. R.; CARDOSO, A. L. H.; SANTIAGO, T. M.; REBÊLO, L. M.; MOREIRA, R. A.; MONTEIRO-MOREIRA, A. C. O.; CAMPOS, A. R. Ethanol-Induced Gastric Injury: Microscopic Analysis of the Protective Effect of Frutalin. International Journal of Peptide Research and Therapeutics, v. 20, ed. 3, p. 325-332, 2014.

ALVES, E. C. S. C.; XAVIER, A.; OTONI, W. C. Organogênese de explante foliar de clones de Eucalyptus grandis x E. urophylla. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v. 39, n. 5, p. 421-430, 2004.

AMIN, M. N.; JAISWAL, V. S. In vitro response of apical bud explants from mature trees of jackfruit (Artocarpus heterophyllus). Plant Cell, Tissue and Organ Culture, v. 33, p. 59-65, 1993.

AMMIRATO, P.V. The regulation of somatic embryo development in plant cell culture: Suspension culture techniques and hormones requirement. Biotechnology, v. 1, p. 68-74, 1983.

AUGUSTO, C. S. S.; BIASI, L. A. Micropropagation of blackbarry cv. Brazos. Scientia Agrária, v. 3, p. 113-132, 2002.

BALA, M.; NAG, T. N.; MATHUR, K.; KUMAR, S.; VYAS, M.; SAINI, A.; TOMAR, B. In vitro callus induction for determination of lectin activity in pea (Pisum sativum L .) variety (AP-1). Romanian Biotechnological Letters, v. 15, n. 6, p. 5781–5787, 2010.

BALBACH, A., BOARIM, D.S.F. As frutas na medicina natural. Sao Paulo: Editora Missionaria, 1992.

BARBOSA, A. M.; CUNHA, P. D. T.; PIGATTO, M. M.; SILVA, M. L. C. Produção e aplicações de exopolissacarídeos fúngicos. Semina, v. 25, p. 29-42, 2004

BARBOSA, W. M.; MEIRA, R. M. S. A.; CORDEIRO, A. T.; OTONI, W. C.; SAKIYAMA, N. S. Análise histológica comparativa da indução de calos em genótipos de Coffea. Simpósio de Pesquisa dos Cafés do Brasil, 4, Londrina, Anais (Brasilia - DF), p. 1-4, 2005.

BARRE, A.; PEUMANS, W. J.; ROSSIGNOL, M.; BORDERIES, G.; CULERRIER, R.; VAN DAMME, E. J. M., ROUGÉ, P. Artocarpin is a polyspecific jacalin-related lectin with a monosaccharide preference for mannose. Biochimie, v. 86, p. 685–691, 2004.

BATALIA, M. A.; MONZINGO, A. F.; ERNST, S.; ROBERTS, W.; ROBERTUS, J. D. The crystal structure of the antifungal protein zeamatin, a member of the thaumatin- like, PR-5 protein family. Nat. Struct. Biol, v. 3, p. 19-23, 1996

BIAN, F.; ZHENG, C.; QU, F.; GONG, X.; YOU, C. Proteomic analysis of somatic embryogenesis in Cyclamen persicum Mill. Plant Mol Biol Rep, v. 28, p. 22–31, 2010.

BLUME, B.; NÜRNBERGER, T.; NASS, N.; SCHEEL, D. Receptor-mediated increase in cytoplasmic free calcium required for activation of pathogen defense in parsley. Plant Cell, v. 12, p. 1425–1440, 2000.

BRANDO-LIMA, A.C., SALDANHA-GAMA, R.F., HENRIQUES, M., MONTEIRO- MOREIRA, A.C.O, MOREIRA, R.A., AND BARJA-FIDALGO, C., Frutalin, a galactose-binding lectin, induces chemotaxis and rearrangement of actin cytoskeleton in human neutrophils: involvement of tyrosine kinase and phosphoinositide3-kinase. Toxicol. Appl. Pharmacol, v. 208, ed. 2, p. 145–154, 2005.

BRANDO-LIMA, A. C., SALDANHA-GAMA, R. F., PEREIRA, C. R., VILLELA, C. G., SAMPAIO, A. L. F., MONTEIRO-MOREIRA, A. C. O., HENRIQUES, M. G. M., MOREIRA, R. A., BARJA-FIDALGO, C. Involvement of phosphatidylinositol-3 kinase- Akt and nuclear factor kappa-B pathways in the effect of frutalin on human lymphocyte. International Immunopharmacology, UK, v. 6, p. 465-472, 2006. BRIJWAL, L.; PANDEY, A.; TAMTA, S. In vitro propagation of the endangered species Berberis aristata DC. via leaf-derived callus. In Vitro Cell.Dev.Biol.-Plant, v. 51, ed. 6, p. 637-647, 2015.

CAMPANA, P. T.; MORAES, D. I.; MONTEIRO-MOREIRA, A. C. O.; BELTRAMINI, L. M. Unfolding and refolding studies of frutalin, a tetrameric D-galactose binding lectin. European Journal of Biochemistry, v. 269, ed. 3, p. 753-758, 2002.

CARLINI, C. R.; GROSSI-DE-SÁ, M. F. Plant toxic proteins with insecticidal properties. A review on their potentialities as bioinsecticides. Toxicon, v. 40, p. 1515–1539, 2002.

CARVALHO, H. F.; RECCO-PIMENTEL, S. M. A Célula. Barueri, SP: Manole, 3. ed., 2013.

CECÍLIO, N. T.; CARVALHO, F. C.; LIU, Y.; MONCRIEFFE, M.; BURANELLO, P. A. A.; ZORZETTO-FERNANDES, A. L.; LUCHE, D. D.; HANNA, E. S.; SOARES, S. G.; FEIZI, T.; GAY, N. J.; GOLDMAN, M. H. S.; ROQUE-BARREIRA, M. C. Yeast expressed ArtinM shares structure, carbohydrate recognition, and biological effects with native ArtinM. International Journal of Biological Macromolecules, v. 82, p. 22-30, 2016.

CHAPLA, P. I.; BESSON, J. C. F.; OLIVEIRA, L. K.; SILVA, J. M.; ROCHA, A. C. S.; STEFANELLO, S. pH, carvão ativado, e agente geleificantes do meio de cultura no crescimento in vitro de Miltonia flavescens Lindl. Plant Cell Cult. Micropropag, v. 5, n. 2, p 87-93, 2009.

CHELIKANI, P.; FITA, I; LOEWEN, P. C. Diversity of structures and properties among catalases. Cellular and Molecular Life Sciences, v. 61, p. 192-208, 2004. CHOWDHURY, S.; AHMED, H.; CHATTERJEE, B. P. Chemical modification studies of Artocarpus lakoocha lectin artocarpin. Biochimie, v. 73, p. 563–571, 1991.

CHRISPEELS, M. J. Biosynthesis, processing, and transport of storage proteins and lectins in cotyledons of developing legume seeds. Philosophical Transactions of The Royal Society of London Series B-Biological Sciences, v. 304, ed. 1120, p. 309-322, 1984.

CORTELAZZO, A.L. Starch detection and dosage in Canavalia ensiformis and C. gladiata cotyledons, during the plantlet development. Revista Brasileira de

Botânica, v. 15, p. 157-16, 1992.

DIBAX, R.; QUISEN, R. C.; BONA, C.; QUOIRIN, M. Plant Regeneration from Cotyledonary Explants of Eucalyptus camaldulensis Dehn and Histological Study of Organogenesis in Vitro. Brazilian Archives of Biology Technology, v. 53, n. 2, p. 311-318, 2010.

ETZLER, M. E. Distribution and function of plant lectins. In LIENER, I. E, SHARON, I. N. The Lectins: Properties, Functions, and Applications in Biology and Medicine. Academic Press, New York, p. 371-435, 1986.

FEITOSA, L. S.; COSTA, A. S.; ARRIGONI-BLANK, M. F.; DIBAX, R.; BOTÂNICO, M. P.; BLANK, A. F. Indução e análise histológica de calos em explantes foliares de Jatropha curcas L. (Euphorbiaceae). Biosci. J., v. 29, n. 2, p. 370-377, 2013.

FERRAO, J. E. M. Fruticultura tropical: espécies com frutos comestíveis, vol. I., Lisboa: Instituto de Investigação Cientifica Tropical, 1999.

FOWLER, M. H. Process strategies for plant cell. Trends Biotech., v. 4, p. 214-219, 1986.

GABIUS, H. J.; ANDRÉ, S.; KALTNER, H.; SIEBERT, H. C. The sugar code : functional lectinomics. Biochimica et Biophysica Acta, v. 1572, p. 165–177, 2002. GALLÃO, M. I.; CORTELAZZO, A. L.; FEVEREIRO, M. P. S.; BRITO, E. S. Biochemical and Morphological Responses to Abiotc Elicitor Chitin in Suspension- Cultured Sugarcane Cells. Brazilian Archives of Biology and Technology, v. 53, n. 2, p. 253-260, 2010.

GALLÃO, M. I.; CORTELAZZO, A. L.; FEVEREIRO, M. P. S.; BRITO, E. S. Response to chitin in suspension-cultured Citrus aurantium cells. Braz. J. Plant Physiol., v. 19, ed. 1, p. 69-76, 2007.

GARCÍA-GONZÁLES, L.; QUIROZ, K.; CARRASCO, B.; CALIGARI, P. Plant tissue culture: Current status, opportunities and challenges. Ciencia e Investigación

Agraria, v. 37, ed. 3, p. 5-30, 2010.

GASPAR, T.; KEVERS, C.; PENEL, C.; GREPPIN, H.; REID, D. M.; THORPE, T. A. Plant hormones and plant growth regulators in plant tissue culture. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant, v. 32, p. 272-289, 1996.

GE HEALTHCARE. Use of NanoVue Spectrophotometer to measure protein concentrations, 2008.

GUPTA, N.; SRIVASTAVA, P. S. Purification and characterization of a lectin from seeds and cotyledonary callus of Zizyphus mauritiana. Plant Cell Reports, v. 17, p. 552-556, 1998.

HABERLANDT, G. Kulturversuche mit isolierten Pflanzenzellen. Sitzungsber. Akad. Wiss. Wien. Math.-Naturwiss. Kl., Abt. J, v. 111, p. 69–92, 1902.

HACKET, W. P. Juvenility, maturation and rejuvenation in woody plants. Horticultural Review, v. 7, p. 109–155, 1985.

HELLMAN, U.; WERNSTEDT, C.; GÓÑEZ, J.; HELDIN, C. H. Improvement of an In- Gel Digestion Procedure for the Micropreparation of Internal Protein Fragments for Amino Acid Sequencing, Analytical Biochemistry, v. 224, p. 451-455, 1995.

HERINGER, A. S.; BARROSO, T.; MACEDO, A. F.; SANTA-CATARINA, C.; SOUZA, G. H. M. F.; FLOH, E. I. S.; SOUZA-FILHO, G. A.; SILVEIRA, V. Label-Free Quantitative Proteomics of Embryogenic and Non-Embryogenic Callus during Sugarcane Somatic Embryogenesis. PLOS ONE, v. 10, ed. 6, p. 1-23, 2015.

HRYCYNA, C. A.; SAPPERSTEIN, S. K.; CLARKE, S.; MICHAELIS, S. The Saccharomyces cerevisiae STE14 gene encodes a methyltransferase that mediates C-terminal methylation of a-factor and RAS proteins. The EMBO Journal, v. 10, n. 7, p. 1699-1709, 1991.

IKEUCHI, M.; SUGIMOTO, K.; IWASE, A. Plant Callus: Mechanisms of Induction and Repression. The Plant Cell, v. 25, p. 3159–3173, 2013.

JAGTAP, U. B.; BAPAT, V. A. Artocarpus: A review of its traditional uses, phytochemistry and pharmacology. Journal of Ethnopharmacology, v. 129, p. 142_– 166, 2010.

JOSHEE, N.; BASTOLA, D. R.; AGRAWAL, V. P.; YADAV, A. K. Lakoocha: A multipurpose tree of warm climate. In: Janick, J., Whipkey, A. (Eds.), Trends in New Crops and New Uses. ASHS Press, p. 405–406, 2002.

KARNOVSKY, M. J. A formaldehyde-glutaraldehyde fixative of high osmolality for use in electron microscopy. J. Cell Biol, v. 27, p.137-8A, 1965.

KERBAUY, G. B. Fisiologia vegetal. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 452p, 2004.

KUANG, H.; WEI, F.; MARANO, M. R.; WIRTZ, U.; WANG, X.; LIU, J.; SHUM, W. P.; ZABORSKY, J.; TALLON, L. J.; RENSINK, W.; LOBST, S.; ZHANG, P.; TORNQVIST, C. E.; TEK, A.; BAMBERG, J.; HELGESON, J.; FRY, W.; YOU, F.; LUO, M. C.; JIANG, J.; BUELL, C. R.; BAKER, B. The R1 resistance gene cluster contains three groups of independently evolving, type I R1 homologues and shows substantial structural variation among haplotypes of Solanum demissum. Plant J., v. 44, p. 37-51, 2005.

LAEMMLI, U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the bacteriophage T4. Nature., v. 227, p. 680-685, 1970.

LAITY, J. H.; LEE, B. M.; WRIGHT, P. E. Zinc finger proteins: new insights into structural and functional diversity. Curr. Opin. Struct. Biol., v. 11, ed. 1, p. 39-46, 2001.

LÉDO, A. S.; SECA, G. S. V.; BARBOZA, S. B. S. C.; SILVA-JUNIOR, J. F. Crescimento inicial de mangabeira (Hancornia speciosa Gomes) em diferentes meios de germinação in vitro. Cienc. agrotec., v. 31, n. 4, p. 989-993, 2007.

LEE, K. P.; LEE, D. W. The Identification of in Vitro Production of Lectin from Callus Cultures of Korean Mistletoe (Viscum album L. var. coloratum). Biosci. Biotechnol. Biochem., v. 77, ed. 4, p. 884-887, 2013.

LEI, X.; WANG, Y.; LI, C.; ZHANG, C.; SONG, J.; LIU, L; BAI, Y. Protein Expression Changes in Anther Callus of Ginseng during Low-Temperature Acclimation. Crop Science, v. 53, p. 1571-1580, 2013.

LI, K.; ZHU, W.; ZENG, K.; ZHANG, Z.; YE, I.; OU, W.; REHMAN, S.; HEUER, B.; CHEN, S. Proteome characterization of cassava (Manihot esculenta Crantz) somatic embryos, plantlets and tuberous roots. Proteome Sci, v. 8, p. 10–21, 2010.

LINDER, P. Dead-box proteins: a family affair—active and passive players in RNP- remodeling. Nucleic Acids Research, v. 34, ed. 15, p. 4168-4180, 2006.

LIU, J. J.; STURROCK, R.; EKRAMODDOULLAH, A. K. M. The superfamily of thaumatin-like proteins: its origin, evolution, and expression towards biological function. Plant Cell Rep, v. 29, p. 419-436, 2010.

LUAN, S.; KUDLA, J.; RODRIGUEZ-CONCEPCION, M.; YALOVSKY, S.; GRUISSEM, W. Calmodulins and Calcineurin B–like Proteins: Calcium Sensors for Specific Signal Response Coupling in Plants. The Plant Cell, v. 14, p. 389-400, 2002.

MA, Q.; ZHOU, W.; ZHANG, P. Transition from somatic embryo to friable embryogenic callus in cassava: dynamic changes in cellular structure, physiological status, and gene expression profiles. Frontiers in Plant Science, v. 6, n. 824, p. 1- 14, 2015.

MA, W.; SMIGEL, A.; TSAI, Y. C.; BRAAM, J.; BERKOWITZ, G. A. Innate immunity signaling: cytosolic Ca2+ elevation is linked to downstream nitric oxide generation through the action of calmodulin or a calmodulin-like protein. Plant Physiology, v. 148, ed. 2, p. 818-828, 2008.

MADRUGA, M. S.; ALBUQUERQUE, F. S. M.; SILVA, I. R. A.; AMARAL, D. S.; MAGNANI, M.; QUEIROGA-NETO, V. Chemical , morphological and functional properties of Brazilian jackfruit (Artocarpus heterophyllus L.) seeds starch. Food Chemistry, v. 143, p. 440–445, 2014.

MANEECHAI, S.; DE-EKNAMKUL, W.; UMEHARA, K.; NOGUCHI, H.; LIKHITWITAYAWUID, K. Flavonoid and stilbenoid production in callus cultures of Artocarpus lakoocha. Phytochemistry, v. 81, p. 42–49, 2012.

McCOWN, B. H.; LLOYD, G. Woody Plant Medium (WPM) - a mineral nutrient formulation for microculture of woody plant-species. Hortscience, v. 16, ed. 3, p. 453, 1981.

MELO, N. F.; OKASAKI, W. Y.; LEITA, C. B.; FÁRI, M. Estabelecimento do cultivo in vitro da aceroleira (Malpighia emarginata DC.). Ciência e Agrotecnologia, Lavras, v.23, n.1, p.102-107, 1999.

MIERNIK, J. A.; JETT, A. A.; JOHNSTON, M. L.; Analysis of soybean tissue culture protein dynamics using difference gel electrophoresis. Journal of Proteomics, v. 130, p. 56-64, 2016.

MILHOME, M. V. L. Frutalina, Lectina α-D-galactose ligante de Artocarpus incisa L., no estudo do cancer de tireoide humana. Análise comparativa com a galectina-3. Dissertação de Mestrado em Bioquímica, 69 p., Universidade Federal do Ceará, 2003.

MONTEIRO-MOREIRA, A. C. O. Caracterização estrutural de três lectinas apresentando especificidades por açúcar distintas, isoladas de sementes de fruta pão (Artocarpus incisa L.). Tese de Doutorado em Bioquímica, 113 p. Universidade Federal do Ceará, 2002.

MONTEIRO-MOREIRA, A. C. O.; PEREIRA, H. M.; VIEIRA-NETO, A. E.; MORENO, F. B. M. B.; LOBO, M. D. P.; SOUSA, F. D.; MOREIRA, R. A. Crystallization and preliminary X-ray diffraction studies of frutalin, an a-D-galactose-specific lectin from Artocarpus incisa seeds. Acta Cryst, v. 71, p. 1282-1285, 2015.

MOREIRA, R. A.; AINOUZ, I. L. Isolectins from jackfruit (Artocarpus integrifolia) seeds. Plant Physiology, v. 61, ed. 4, p. 118, 1978.

MOREIRA, R. A.; CASTELO-BRANCO, C. C.; MONTEIRO, A. C. O.; TAVARES, R. O.; BELTRAMINI, L. M. Isolation and partial characterization of a lectin from Artocarpus incisa L. seeds. Phytochemistry, v. 47, n. 7, p. 1183–1188, 1998.

MOREIRA, R. A.; OLIVEIRA, J. T. A. Lectins from the Genus Artocarpus. Biologia Plantarum, v. 25, n. 5, p. 343_{–348, 1983.}

MOREIRA, R. A., PERRONE, J. C. Purification and Partial Characterization of a Lectin from Phaseolus vulgaris. Plant Physiology, v. 59, ed. 5, p. 783_{–787, 1977.} MORENO, A. N.; JAMUR, M. C.; OLIVER, C.; ROQUE-BARREIRA, M. C. Mast cell degranulation induced by lectins: effect on neutrophil recruitment. Int. Arch. Allergy Immunol., v. 132, p. 221-230, 2003.

MURASHIGE, T.; SKOOG, F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, v. 15, p. 473-497, 1962.

MURCH, S. J.; RAGONE, D.; SHI, W. L.; ALAN, A. R.; SAXENA, P. K. In vitro conservation and sustained production of breadfruit (Artocarpus altilis, Moraceae): modern technologies for a traditional tropical crop. Naturwissenschaften, v. 95, p. 99-107, 2008.

OLIVEIRA, C.; NICOLAU, A.; TEIXEIRA, J. A.; DOMINGUES, L. Cytotoxic Effects of Native and Recombinant Frutalin, a Plant Galactose-Binding Lectin, on HeLa Cervical Cancer Cells. Journal of Biomedicine and Biotechnology, vol. 2011, n. 568932, p. 1-9, 2011.

OLIVEIRA, H. S.; LEMOS, O. F.; MIRANDA, V. S.; MOURA, H. C. P.; CAMPELO, M. F.; SANTOS, L. R. R. Estabelecimento e multiplicação in vitro de brotos no processo de micropropagação de cultivares de bananeira (Musa spp.). Acta Amaz., Manaus, v. 41, n. 3, p. 369-376, 2011.

OSMAN, N. I.; SIDIK, N. J.; AWAL, A. Effects of variations in culture media and hormonal treatments upon callus induction potential in endosperm explant of Barringtonia racemosa L. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, v. 6, ed. 2, p. 143-147, 2016.

PAN, Z.; GUAN, R.; ZHU, S.; DENG, X. Proteomic analysis of somatic embryogenesis in Valencia sweet orange (Citrus sinensis Osbeck). Plant Cell Rep, v. 28, p. 281–289, 2009.

PASQUAL, M.; HOFFMANN, A.; RAMOS, J. D. Cultura de tecidos vegetais: tecnologia e aplicações - introdução: fundamentos básicos. Lavras: UFLA/FAEPE. 159 pp, 1997.

PASQUAL, M. Introdução à cultura de tecidos. Lavras : ESAL, 33 pp, 1990.

PEREIRA-DA-SILVA, G.; MORENO, A. N.; MARQUES, F.; OLIVER, C.; JAMUR, M. C.; PANUNTO-CASTELO, A.; ROQUE-BARREIRA, M. C. Neutrophil activation induced by the lectin KM+ involves binding to CXCR2. Biochimia et Biophysica Acta, v. 1760, p. 86-94, 2006.

PEUMANS, W. J.; VAN DAMME, E. J. M. Lectins as plant defense proteins. Plant Physiol, v. 109, p. 345-352, 1995.

PEUMANS, W. J.; VAN DAMME, E. J. M. The role of lectins in plant defence. Histoch. Journal, v. 27, p. 253-271, 1995.

PIERIK, R. L. M. Rejuvenation and micropropagation, In: Nijkamp, H. J. J.; Van Der Plas, L. H. W.; Van Aartrijk, K. (Eds) Progress in Plant Cellular and Molecular Biology. Kluwer Academic Publishers, p. 91–101, 1990.

POUREBAD, N.; MOTAFAKKERAZAD, R.; KOSARI-NASAB, M.; AKHTAR, N. F.; MOVAFEGHI, A. The influence of TDZ concentrations on in vitro growth and production of secondary metabolites by the shoot and callus culture of Lallemantia iberica. Plant Cell Tiss Organ Cult, v. 122, ed. 2, p. 331-339, 2015.

QUIJANO J., ARANGO G. J. The breadfruit from Colombia––a detailed chemical analysis. Economic Botany, v.33, n. 2, p.199–202, 1979.

RAGONE, D. Breadfruit. Artocarpus altilis (Parkinson) Fosberg. Promoting the conservation and use of underutilized and neglected crops. 10. Roma: IPGRI, 1997. RAHMAN, M. A. Effects of nutrient on the growth and survival of in vitro Artocarpus heterophyllus Lam. plantlets after transfer to ex vitro conditions in the glasshouse. J.

Hort. Sci, v. 63, p. 329-335, 1988.

RAHMAN, M. A.; BLAKE, J. Factors affecting in vitro proliferation and rooting of shoots of jackfruit (Artocarpus heterophyllus Lam.). Plant Cell Tiss. Org. Cult, v. 13, p. 179-187, 1988a.

RAHMAN, M. A.; BLAKE, J. The effects of medium composition and culture conditions on in vitro rooting and ex vitro establishment of jackfruit (Artocarpus heterophyllus Lam.). Plant Cell Tiss. Org. Cult, v.13, p. 189-200, 1988b.

RAO, N. K.; NARAYANASWAMY, S.; CHACKO, E. K.; DORESWAMY, R. Tissue culture of the jack tree. Current Science, v. 50, p. 310-312, 1981.

RATHORE, J. S.; RATHORE, V.; SHEKHAWAT, N. S.; SINGH, R. P.; LILER, G.; PHULWARIA, M.; DAGLA, H. R. Micropropagation of Woody Plants. Plant Biotechnology and Molecular Markers, p. 195-205, 2004.

REUYL, D. I. Biosynthesis of the 7-deazaguanosine hypermodified nucleosides of transfer RNA. Bioorganic Chemistry, v. 31, ed. 1, p. 24-43, 2003.

ROSA, J. C.; OLIVEIRA, P. S. L.; GARRATT, R.; BELTRAMINI, L.; RESING, K.; ROQUE-BARREIRA, M. C.; GREENE, L. J. KM+, a mannose-binding lectin from Artocarpus integrifolia: Amino acid sequence, predicted tertiary structure, carbohydrate recognition, and analysis of the _{β-prism fold. Protein Science, v. 8, p.} 13-24, 1999.

ROUSE-MILLER, J.; DUNCAN, J. E. In vitro propagation of Artocarpus altilis (Park.) Fosberg (breadfruit) from mature plant material. In Vitro Cell Dev Biol Plant, v. 36, p. 115-117, 2000.

ROY, S. K.; RAHMAN, S. L.; MAJUMDAR, R. In vitro propagation of jackfruit (Artocarpus heterophyllus Lam.). J. Hort. Sci, v. 65, p. 355-358, 1990.

SAEED, T.; SHAHZAD, A. High frequency plant regeneration in Indian Siris via cyclic somatic embryogenesis with biochemical, histological and SEM investigations. Industrial Crops and Products, v. 76, p. 623-637, 2015.

SANTOS, A. S. A.; MACHADO, I. S.; LEÃO, A. L.; RAMOS, A. A. Concentrações de BAP e TDZ na propagação in vitro de curauá (Ananas erectifolius L.B. Smith): a influência das citocininas sintéticas na cultura de tecido. Revista de Biotecnologia Ciência & Desenvolvimento, Brasília, v.8, n.35, 2005.

SANTOS, C. G.; PAIVA, R.; PAIVA, P. D. O.; PAIVA, E. Indução e análise bioquímica de calos em segmentos foliares e nodais de Coffea canephora L. cv. Apoatã. Magistra, v. 20, p. 22-29, 2008.

SANTOS-DE-OLIVEIRA, R.; DIAS-BARUFFI, M.; THOMAZ, S. M.; BELTRAMINI, L. M.; ROQUE-BARREIRA, M. C. A neutrophil migration inducing lectin from Artocarpus integrifolia. Journal of Immunology, v. 153, p. 1798–1807, 1994.

SARTOR, F. R.; ZANOTTI, R. F.; PÔSSA, K. F.; PILON, A. M.; FUKUSHIMA, C. H. Diferentes meios de cultura e antioxidantes no estabelecimento in vitro do Jacarandá da Bahia. Biosci. J., v. 29, p. 408-411, 20133.

SHARON, N.; LIS, H. Lectins as Cell Recognition Molecules. Science, v. 246, p. 227–234, 1989.

SILVA, A. L. C.; HORTA, A. C. G.; MOREIRA, R. A.; BELTRAMINI, L. M.; ARAÚJO, A. P. U. Production of Abrus pulchellus ribosome-inactivating protein from seeds callus culture. Toxicon, v. 41, p. 841-849, 2003.

SILVA, F. M. B.; MOREIRA, R. A.; HORTA, A. C. G.; SILVA, A. L. C. The Lectin Content of Cotyledonary Callus from Canavalia brasiliensis (Mart. ex. Benth). Asian Journal of Plant Sciences, v. 4, ed. 3, p. 214-219, 2005.

SILVA, T. R. G.; CORTELAZZO, A. L.; DIETRICH, S. M. C. Cytological aspects of storage mobilization in seeds of Dalbergia miscolobium during germination and plantlet growth. Ciên. Cult., v. 49, p. 219-222, 1997.

SIQUEIRA, E. R.; INOUE, M. T. Controle de oxidação na cultura de tecidos de coqueiro. Pesq. agropec. bras., v. 26, ed. 7, p. 949-953, 1991.

SMITH, R. H. Plant tissue culture _{– Techniques and Experiments. Acad. Press,} INC, 1992.

SOARES, F. P.; PAIVA, R.; STEIN, V. C.; NERY, F. C.; NOGUEIRA, R. C.; OLIVEIRA, L. M. Efeito de meios de cultura, concentrações de GA3 e pH sobre a germinação in vitro de mangabeira (Hancornia speciosa Gomes.). Ciência e Agrotecnologia, Lavras, v.33, Edição Especial, p.1847-1852, 2009.

STABA, E. J. Plant tissue culture as a source of biochemicals. Florida: CRC Press, 304 p, 1980.

SUN, X. L.; YU, Q. Y.; TANG, L. L.; JI, W.; BAI, X.; CAI, H.; LIU, X. F.; DING, X. D.; ZHU, Y. M. GsSRK, a G-type lectin S-receptor-like serine/threonine protein kinase, is a positive regulator of plant tolerance to salt stress. Journal of Plant Physiology, v. 170, ed. 5, p. 505-515, 2013.

SURI, S. S., RAMAWAT, K. G. In vitro hormone regulation of laticifer di_{fferentiation in} Calotropis procera. Annals of Botany, v.75, p. 477- 480, 1995.

TAN, B. C.; CHIN, C. F.; LIDDELL, S.; ALDERSON, P. Proteomic Analysis of Callus Development in Vanilla planifolia Andrews. Plant Mol Biol Rep, v. 31, p. 1220-1229, 2013.

THORPE, T. History of plant tissue culture. Molecular Biotechnology, v. 37, p. 169- 180, 2007.

TODOROV, K. A.; GARCIA, G. A. Role of Aspartate 143 in Escherichia coli tRNA- Guanine Transglycosylase:  Alteration of Heterocyclic Substrate Specificity. Biochemistry, v. 45, ed. 2, p. 617-625, 2006.

TOLEDO, K. A.; SCWARTZ, C.; OLIVEIRA, A. F.; CONRADO, M. C. A. V.; BERNARDES, E. S.; FERNANDES, L. C.; ROQUE-BARREIRA, M. C.; PEREIRA- DA-SILVA, G.; MORENO, A. N. Neutrophil activation induced by ArtinM: Release of inflammatory mediators and enhancement of effector functions. Immunology Letters, v. 123, p. 14-20, 2009.

VALLEDOR, L.; JORRÍN, J. Back to the basics: Maximizing the information obtained by quantitative two dimensional gel electrophoresis analyses by an appropriate experimental design and statistical analyses. J Proteomics, v. 74, p. 1–18, 2011. VAN DAMME, E. J. M.; BARRE, A.; ROUGÉ, P.; PEUMANS, W. J. Cytoplasmic/nuclear plant lectins : a new story. Trends in Plant Science, v. 9, n. 10, p. 8–13, 2004.

VAN DAMME, E. J. M.; PEUMANS, W. J.; PUSZTAI, A.; BARDOCZ, S. Handbook of Plants Lectins: Properties and Biochemical Applications. Wiley, 452 pp, 1998. VAN LOON, L. C.; REP, M.; PIETERSE, C. M. J. Significance of inducible defense- related proteins in infected plants. Annual Review of Phytopathology, v. 44, p. 135-62, 2006.

VAN WINKLE, S.; JOHNSON, S.; PULLMAN, G.S.The impact of gelrite and activated carbon on the elemental composition of two conifer embryogenic tissue initiation media. Plant Cell Report, v.21, p.1175-1182, 2003.

VASCONCELOS, I. M., OLIVEIRA, J. T. A. Antinutritional properties of plant lectins. Toxicon, v. 44, p. 385–403, 2004.

VIJAYA, G. L.; GIRI, C. C. Plant regeneration via organogenesis from shoot base- derived callus of Arachis stenosperma and A. villosa. Current Science, v. 85, ed. 11, p. 1624-1629, 2003.

WANG, F.; BAI, M. Y.; DENG, Z.; OSES-PRIETO, J. A.; BURLINGAME, A. L.; LU, T.; CHONG, K.; WANG, Z. Y. Proteomic study identifies proteins involved in brassinosteroid regulation of rice growth. J Integr Plant Biol, v. 52, p. 1075_–1085, 2010.

WARCOL, M.; SKRZYPEK, E.; KUSIBAB, T.; DUBERT, F. Induction of somatic embryogenesis and biochemical characterization of Cordyline australis (G. Forst.) Endl. ‘Red Star’ callus. Scientia Horticulturae, v. 192, p. 338-345, 2015.

WEBER, R. L. M.; WIEBKE-STROHM, B.; BREDEMEIER, C.; MARGIS-PINHEIRO, M.; BRITO, G. G.; RECHENMACHER, C.; BERTAGNOLLI, P. F.; SÁ, M. E. L.; CAMPOS, M. A.; AMORIM, R. M. S.; BENEVENTI, M. A.; MARGIS, R.; GROSSI-DE- SA, M. F.; BODANESE-ZANETTINI, M. H. Expression of an osmotin-like protein from Solanum nigrum confers drought tolerance in transgenic soybean. BMC Plant

Biology, v. 14, n. 343, p. 1-9, 2014.

YAMAKAWA, H.; MITSUHARA, I.; ITO, N.; SEO, S.; KAMADA, H.; OHASHI, Y. Transcriptionally and post-transcriptionally regulated response of 13 calmodulin genes to tobacco mosaic virus-induced cell death and wounding in tobacco plant. Eur. J. Biochem, v. 268, p. 3916–3929, 2001.

YIN, L.; TAO, Y.; ZHAO, K.; SHAO, J.; LI, X.; LIU, G.; LIU, S.; ZHU, L. Proteomic and transcriptomic analysis of rice mature seed-derived callus differentiation. Proteomics, v. 7, p. 755–768, 2007.

YIN, L.; LAN, Y.; ZHU, L. Analysis of the protein expression profiling during rice

In document Valgfrie former – mulighet eller byrde? (sider 23-27)